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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Efecto tóxico del DDT, clordano y agua de la presa Ignacio Ramírez (México), sobre Daphnia magna (Crustacea: Daphnidae)]]></article-title>
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<institution><![CDATA[,Laboratorio de Toxicología Acuática  ]]></institution>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="es"><p><![CDATA[Actualmente en México son empleados los plaguicidas diclorodifeniltricloroetano (DDT) y clordano (CLO) para combatir la malaria y termitas. De 1990 a 1996 un total de 27 ton de DDT y 508 de CLO, en forma de productos técnicos, fueron importados. El objetivo de este estudio fue establecer una metodología para determinar el impacto ambiental que pueden producir estos compuestos sobre un embalse. El efecto tóxico del DDT y CLO fue evaluado sobre la actividad de la o-demetilasa (OD) y del acetilcolinesterasa (AchA) del cladócero Daphnia magna al exponerla a diferentes concentraciones de los insecticidas disueltos en el agua de tres sitios de la presa Ignacio Ramírez (PIR). El efecto del agua contaminada con los insecticidas sobre la actividad de la AChA y OD, así como la CL50, fueron utilizadas como indicadores de exposición para determinar los lugares más contaminadas de la PIR. Las características fisicoquímicas del agua así como la biodiversidad de los sitios en estudio de la presa fueron considerados. Los resultados obtenidos demuestran que la estación cercana a la compuerta exhibe un potencial de toxicidad, ya que las actividades enzimáticas fueron modificadas. Se sugiere utilizar las actividades de AchA y OD del cladócero para evaluar la toxicidad de un cuerpo de agua contaminado por insecticidas organoclorados.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[ <center><b><font face="Arial,Helvetica">Efecto t&oacute;xico del DDT, clordano y agua de la presa Ignacio Ram&iacute;rez</font></b>     <br><b><font face="Arial,Helvetica">(M&eacute;xico), sobre Daphnia magna (Crustacea: Daphnidae)</font></b><font size=-1></font>     <p><font size=-1><b><font face="Arial">Laura Mart&iacute;nez-Tabche<a NAME="1"></a></font></b><sup><font face="Arial,Helvetica"><a href="#1ab">1</a><b>&nbsp; </b></font></sup><b><font face="Arial">Martha Romero Sol&iacute;s<a NAME="1a"></a></font></b><sup><font face="Arial,Helvetica"><a href="#1ab">1</a></font></sup><b><font face="Arial"> Eugenia L&oacute;pez L&oacute;pez&nbsp;<a NAME="2"></a></font></b><sup><font face="Arial,Helvetica"><a href="#2a">2</a></font></sup><b><font face="Arial"> y&nbsp; Marcela Galar Mart&iacute;nez&nbsp;<a NAME="1ac"></a></font></b><sup><font face="Arial,Helvetica"><a href="#1ab">1</a></font></sup></font><font size=-1></font>     <p><font face="Arial,Helvetica"><font size=-1>Recibido 26-X-1998. Corregido 5-VII-1999. Aceptado 6-VII-1999.</font></font></center> <font size=-1></font>     <p>    <br><b><font face="Arial,Helvetica"><font size=-1></font></font></b>     <p><b><font face="Arial,Helvetica"><font size=-1>Abstract</font></font></b><font face="Arial,Helvetica"><font size=-1></font></font>     <p><font face="Arial,Helvetica"><font size=-1>Chlorodiphenylnitrichloroethane (DDT) and chlordane (CLO) are currently used in Mexico to control malaria and termites. From 1990 to 1996 a total of 27 ton of DDT and 508 of CLO were imported. We establish a methodology to determine their environmental impact in a Mexican dam (Ignacio Ram&iacute;rez). The toxic effect of DDT and CLO were evaluated on the o-demethylase (OD) and acethycholinesterase activities (AchA) of the cladoceran Daphnia magna exposed to different concentrations of the insecticides solved in water from three sites. Their effect on the AchA and OD activities, and so the CL50 were used as exposure bioindicators to determine the more polluted sites. The physicochemical characteristics of water and the biodiversity of the dam test sites were considered. The station near the floodgate has toxicity potential because enzimatic activities were modified. We suggest the use of AchA and OD activities measure in the cladoceran to evaluate the toxicity of a water body polluted by organochlorate insecticides.</font></font>     <br><font size=-1></font>&nbsp;<b><font face="Arial,Helvetica"><font size=-1></font></font></b>     <p><b><font face="Arial,Helvetica"><font size=-1>Key words</font></font></b><font face="Arial,Helvetica"><font size=-1></font></font>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><font face="Arial,Helvetica"><font size=-1>Daphnia magna, pesticides, o-demethylase, acetylcholinesterase, toxicity, reservoir.</font></font>     <br><font size=-1></font>&nbsp;<font size=-1></font>     <p><font face="Arial,Helvetica"><font size=-1>El sesenta por ciento del territorio mexicano desde el nivel del mar hasta los 1 800 m de altitud presenta condiciones favorables para la transmisi&oacute;n de la malaria. Esto incluye las vertientes del Oc&eacute;ano Pac&iacute;fico y del Golfo de M&eacute;xico, la pen&iacute;nsula de Yucat&aacute;n y las cuencas interiores de la meseta superior, donde habitan alrededor de 45 millones de personas. En 1985 se registraron 133 700 casos de malaria en 14 000 localidades. De 1 985 a 1 989, el promedio anual fue de 117 000 casos. Actualmente el uso del DDT est&aacute; autorizado solamente en las campa&ntilde;as de salud p&uacute;blica y sigue siendo una importante herramienta en la lucha contra la transmisi&oacute;n de la malaria. En M&eacute;xico las importaciones, en el per&iacute;odo de 1990 a 1996, de este compuesto fueron de 27 toneladas (<a href="#Anónimo">An&oacute;nimo 1997</a>).</font></font><font size=-1></font>     <p><font face="Arial,Helvetica"><font size=-1>Otro plaguicida organoclorado empleado para la eliminaci&oacute;n de termitas en determinados productos de madera es el CLO. M&eacute;xico no fabrica el ingrediente activo, sin embargo, el compuesto es formulado por una sola empresa. Cinco estados (Nuevo Le&oacute;n, Jalisco, Coahuila, el Estado de M&eacute;xico y el Distrito Federal) son abastecidos con el insecticida en su presentaci&oacute;n comercial. Existen nueve autorizaciones para el uso del CLO en la Rep&uacute;blica Mexicana, incluyendo una para la preparaci&oacute;n del producto t&eacute;cnico; las otras est&aacute;n limitadas al control de termitas. De 1990 a 1996, un total de 508 toneladas de producto t&eacute;cnico fueron importadas de Estados Unidos (<a href="#Anónimo">An&oacute;nimo 1997</a>).</font></font><font size=-1></font>     <p><font face="Arial,Helvetica"><font size=-1>Los compuestos organoclorados, en general, alteran la cin&eacute;tica de los iones Na<sup>+</sup>, K<sup>+</sup> y Ca<sup>++</sup> de la membrana del ax&oacute;n. Se ha propuesto su participaci&oacute;n en la producci&oacute;n de lipoperoxidaci&oacute;n de las membranas biol&oacute;gicas, por la formaci&oacute;n del ani&oacute;n super&oacute;xido. A causa de esta toxodinamia estos xenobi&oacute;ticos, pueden producir efectos sobre el sistema nervioso y el de biotransformaci&oacute;n de xenobi&oacute;ticos de los diferentes organismos que se exponen a estos contaminantes (<a href="#Repetto">Repetto <i>et al.</i> 1995</a>).</font></font><font size=-1></font>     <p><font face="Arial,Helvetica"><font size=-1>Los clad&oacute;ceros, organismos que se emplean para evaluar la toxicidad de un cuerpo de agua (<a href="#Gray">Gray 1989</a>), presentan un sistema nervioso, lo cual sugiere la presencia de la acetilcolina (Ach) (<a href="#Atwood">Atwood 1982</a>). Este neurotrasmisor normalmente es hidrolizado por la AChA, la cual es muy sensible a diferentes contaminantes, entre los que se pueden mencionar a los metales pesados, detergentes e hidrocarburos polic&iacute;clicos (<a href="#Martínez97">Mart&iacute;nez-Tabche <i>et al.</i> 1997</a>).</font></font><font size=-1></font>     <p><font face="Arial,Helvetica"><font size=-1>En los crust&aacute;ceos, la biotransformaci&oacute;n de xenobi&oacute;ticos se lleva a cabo por la funci&oacute;n mixta oxidasa (FMO) (<a href="#Martínez94b">Mart&iacute;nez-Tabche <i>et al.</i> 1994b</a>), sistema que se encarga casi siempre de aumentar la hidrosolubilidad de los compuestos, sin embargo, este proceso puede ser modificado, por diferentes xenobi&oacute;ticos. Los compuestos organoclorados estimulan la FMO tanto en la fauna como en organismos de laboratorio, lo cual puede generar compuestos menos o m&aacute;s t&oacute;xicos (<a href="#Ecobichon">Ecobichon 1996</a>).</font></font><font size=-1></font>     <p><font face="Arial,Helvetica"><font size=-1>El objetivo de este estudio fue evaluar la toxicidad del agua de la presa Ignacio Ram&iacute;rez sembrada con DDT y CLO sobre la actividad de la AChA y la OD del clad&oacute;cero <i>Daphnia magna</i> Straus 1 820, y establecer una metodolog&iacute;a sensible, econ&oacute;mica y r&aacute;pida para evaluar el impacto ambiental que pueden producir estos compuestos sobre un ecosistema acu&aacute;tico.</font></font>     <br><font size=-1></font>&nbsp;     <p>    ]]></body>
<body><![CDATA[<br><font size=-1></font>     <p><b><font face="Arial,Helvetica"><font size=-1>Materiales y M&eacute;todos</font></font></b><font size=-1></font>     <p><font face="Arial,Helvetica"><font size=-1><b>Trabajo de campo</b>: El presente estudio se realiz&oacute; en la Presa Ignacio Ram&iacute;rez (PIR), r&iacute;o La Gavia (19&deg; 50’ y 99&deg;46’ N 99&deg;50’ y 99&deg;46’ W). La presa recibe la afluencia de los r&iacute;os El Salitre, El Muerto, Las Cebollas, San Pedro, El Guajolota, El Almoloya principalmente. El &aacute;rea de la cuenca es de 505 Km<sup>2</sup> y la capacidad total de almacenamiento 20.5 millones de m<sup>3</sup> (usado: 93.30 millones de m<sup>3 </sup>al a&ntilde;o). La poblaci&oacute;n econ&oacute;micamente activa (agricultura, ganader&iacute;a, caza y pesca) ocupa 219 744.380 ha. El clima es templado subh&uacute;medo (pluviosidad 822.5 mm anuales). La erosi&oacute;n es importante (<a href="#De la Vega">De la Vega <i>et al.</i> 1997</a>).</font></font><font size=-1></font>     <p><font face="Arial,Helvetica"><font size=-1>El muestreo se hizo en septiembre de 1997 (estaci&oacute;n de lluvia) en tres sitios seg&uacute;n su toxicidad (<a href="#De la Vega">De la Vega <i>et al.</i> 1997</a>). Se tomaron muestras de la columna de agua superficial (hasta 50 cm). En el campo se determinaron por triplicado la temperatura y el pH. Las determinaciones qu&iacute;micas, de s&oacute;lidos suspendidos y turbiedad con un espectrofot&oacute;metro Hach DRL-2000 y conductividad con un conduct&iacute;metro Hanna instruments HI 8733. Ox&iacute;geno disuelto seg&uacute;n el m&eacute;todo Winkler). Tambi&eacute;n se tomaron muestras de plancton.</font></font><font size=-1></font>     <p><font face="Arial,Helvetica"><font size=-1><b>Cultivo del organismo de prueba:</b> La <i>D. magna</i> fue cultivada en el laboratorio por partenog&eacute;nesis en agua reconstituida, cuyas caracter&iacute;sticas fisicoqu&iacute;micas son: dureza (como CaCO<sub>3</sub>)=30 a 35 mg/l, pH=7.2 a 7.6, ox&iacute;geno disuelto=6.5 a 7.5 mg/l, con un fotoper&iacute;odo natural y fue mantenida a una temperatura de 20&plusmn;2&deg;C, con una dieta de alga verde <i>Ankistrodesmus falcatus</i>, cuya densidad celular se ajust&oacute; a 5 X10<sup>6 </sup>c&eacute;lulas/ml<b>.</b></font></font><font size=-1></font>     <p><font face="Arial,Helvetica"><font size=-1><b>Determinaci&oacute;n de la toxicidad aguda de la PIR:</b> A 18 lotes constituidos por 15 neonatos cada uno (un d&iacute;a de nacidos) se expusieron al agua de cada uno de los sitios de estudio de la PIR a concentraciones de 0, 6.25, 12.5, 25, 50 y 100 %. El volumen final de cada uno de los lotes fue de l00 ml, el cual se alcanz&oacute; con agua reconstituida. Durante el per&iacute;odo de exposici&oacute;n (48 hr) los crust&aacute;ceos no se alimentaron. La falta de movimiento de los organismos se utiliz&oacute; como indicador de mortalidad.</font></font><font size=-1></font>     <p><font face="Arial,Helvetica"><font size=-1><b>Determinaci&oacute;n de la toxicidad aguda del DDT y CLO:</b> La evaluaci&oacute;n de la toxicidad aguda del DDT y CLO, (insecticidas grado t&eacute;cnico al 100 y 93%, Tekem, M&eacute;xico respectivamente) se realiz&oacute; en <i>D. magna</i>. A 40 lotes de 15 clad&oacute;ceros de un d&iacute;a de nacidos se distribuyeron en un lote testigo, que se prepar&oacute; &uacute;nicamente con agua reconstituida, un control al cual se le adicion&oacute; el disolvente del DDT y del CLO (un ml de acetato de etilo disuelto en l00 ml de agua de cada sitio de estudio de la PIR) y 36 que se intoxicaron con las siguientes concentraciones de cada uno de los plaguicidas: 0.01, 0.03, 0.05, 0.7, 0.9 y 1.0 mg/l (cada una de estas soluciones se disolvieron con el agua de cada uno de los sitios en estudio de la PIR). Estas se prepararon a partir de una soluci&oacute;n patr&oacute;n de 100 mg/l (1 ml de acetato de etilo/l de agua de PIR). Despu&eacute;s de 48 h de intoxicaci&oacute;n se determin&oacute; el n&uacute;mero total de organismos inm&oacute;viles. Cada experimento se llev&oacute; a cabo por triplicado.</font></font><font size=-1></font>     <p><font face="Arial,Helvetica"><font size=-1><b>Determinaci&oacute;n de la toxicidad subletal del agua de la PIR y de los plaguicidas:</b> 500 mg de clad&oacute;ceros (21 d&iacute;as de nacidos) (peso h&uacute;medo) fueron expuestos al agua de la presa con y sin plaguicidas. Despu&eacute;s de 48 h todos los organismos se homogeneizaron con 10 ml de amortiguador de fosfatos (Merck), pH 7.4 y centrifugado a 14 500 rpm durante 20 min a 14&deg;C. En el sobrenadante se determin&oacute; la actividad de la AChA y OD, ya que &eacute;ste se utiliz&oacute; como fuente de enzimas.</font></font><font size=-1></font>     <p><font face="Arial,Helvetica"><font size=-1><b>Efecto sobre OD:</b> La presencia de la actividad enzim&aacute;tica de la FMO en <i>D. magna</i> fue estudiada a trav&eacute;s de la biotransformaci&oacute;n del para nitro anisol (PNA) a para nitrofenol (PNF), reacci&oacute;n que se lleva a cabo por OD. La actividad de esta enzima sobre el PNA fue medida por el m&eacute;todo modificado de McMahon <i>et al.</i> (1963). A 14 tubos con 1.0 ml del sobrenadante (obtenido en el ensayo de toxicidad subletal) se le adicion&oacute; 1.0 ml de amortiguador de fosfatos 0.25 M (pH 7.4), 2.9 ml de agua destilada y 7.51 mmol de PNA. El volumen total fue de 5.0 ml. Se incubaron a 37 &deg;C. Despu&eacute;s de 60 min, la reacci&oacute;n se detuvo al adicionarle 1.0 ml de &aacute;cido tricloroac&eacute;tico (TCA) (30%). Las mezclas fueron centrifugadas a 15 000 rpm durante 10 min a 4&deg;C, al sobrenadante se mezcl&oacute; con 2.0 ml de NaOH 2.0 N. La concentraci&oacute;n de PNF fue determinada a 400 nm de absorbancia en un espectrofot&oacute;metro Varian DMS 90 por comparaci&oacute;n con un est&aacute;ndar.</font></font><font size=-1></font>     <p><font face="Arial,Helvetica"><font size=-1><b>Efecto sobre la AchA:</b> La actividad de la AChA fue evaluada a trav&eacute;s de la determinaci&oacute;n de la ACh no hidrolizada por el sobrenadante del clad&oacute;cero, el cual contiene esta enzima. La concentraci&oacute;n de ACh remanente reacciona con la hidroxilamina para formar un complejo colorido (m&eacute;todo de Hestrin 1949). A 1.0 ml del sobrenadante (obtenido en el ensayo de toxicidad subletal) se le adicion&oacute; 1.0 ml 0.8 &micro;M de Ach y 3 ml de amortiguador de trisfosfatos (pH=7) y posteriormente se incub&oacute; a 37&deg;C. Despu&eacute;s de 30 min, la reacci&oacute;n fue suspendida al adicionarle 2.0 ml de hidroxilamina 2.0 M y 1.0 ml de &aacute;cido clorh&iacute;drico 4 N y 1.0 ml de cloruro f&eacute;rrico 0.39 M disuelto en &aacute;cido clorh&iacute;drico 0.1N. El color desarrollado fue medido a 540 nm en un espectrofot&oacute;metro Varian Mod 980. La concentraci&oacute;n de Ach no hidrolizada fue comparada con un est&aacute;ndar. La concentraci&oacute;n de prote&iacute;nas se determin&oacute; en el sobrenadante por el m&eacute;todo de Bradford (Bradford 1976). A 25 &micro;l del sobrenadante se le adicionaron 75 &micro;l de agua destilada y 2.5 ml de reactivo de Bradford (100 mg de azul de commassie se disolvieron en 50 ml de etanol al 95 % con 100 ml de &aacute;cido fosf&oacute;rico, el volumen final de este reactivo fue de 1000 ml, el cual se alcanz&oacute; con agua destilada). Despu&eacute;s de 5 min, la absorbancia del complejo colorido se midi&oacute; a una longitud de inda de 595 nm. Estos datos se interpolaron en una curva tipo de alb&uacute;mina ( 100 mg de alb&uacute;mina s&eacute;rica bovina en 100 ml de agua destilada). La actividad enzim&aacute;tica fue expresada en &micro;mol de ACh hidrolizada/ mg prote&iacute;na/ min.</font></font>     ]]></body>
<body><![CDATA[<br><font size=-1></font>&nbsp;     <p>    <br><font size=-1></font>     <p><b><font face="Arial,Helvetica"><font size=-1>Resultados</font></font></b><font size=-1></font>     <p><font face="Arial,Helvetica"><font size=-1>La temperatura del agua de la PIR manifest&oacute; un peque&ntilde;o gradiente entre superficie y fondo; el ox&iacute;geno disuelto alcanz&oacute; concentraciones muy bajas desde la superficie hasta el fondo. Los valores de pH fueron cercanos a la neutralidad en toda la columna de agua. En esta misma los valores de s&oacute;lidos suspendidos as&iacute; como la de los sulfatos fueron elevados, alcanzando una transparencia de 8 cm (<a href="#CUADRO1">Cuadro 1</a>).</font></font><font size=-1></font>     <p>    <br><font size=-1></font>     <center>     <p><a NAME="CUADRO1"></a><font face="Arial,Helvetica"><font size=-1>CUADRO 1</font></font>     <br><font face="Arial,Helvetica"><font size=-1>Propiedades fisicoqu&iacute;micas de la presa Ignacio Ram&iacute;rez</font></font></center>      ]]></body>
<body><![CDATA[<br><font size=-1></font>&nbsp;     <center><table BORDER=0 CELLSPACING=0 CELLPADDING=4 WIDTH="674" > <tr> <td VALIGN=TOP WIDTH="25%">     <center><font face="Arial,Helvetica"><font size=-1>Par&aacute;metros</font></font></center> </td>  <td VALIGN=TOP WIDTH="25%">     <center><font face="Arial,Helvetica"><font size=-1>Sitio 1</font></font></center> </td>  <td VALIGN=TOP WIDTH="25%">     <center><font face="Arial,Helvetica"><font size=-1>Sitio 2</font></font></center> </td>  <td VALIGN=TOP WIDTH="25%">     <center><font face="Arial,Helvetica"><font size=-1>Sitio 3</font></font></center> </td> </tr>  <tr> <td VALIGN=TOP WIDTH="25%">     <center><font face="Arial,Helvetica"><font size=-1>Calcio (mg/l)</font></font></center> </td>  <td VALIGN=TOP WIDTH="25%">     <center><font face="Arial,Helvetica"><font size=-1>36&plusmn;1.2</font></font></center> </td>  <td VALIGN=TOP WIDTH="25%">     <center><font face="Arial,Helvetica"><font size=-1>36&plusmn;1.7</font></font></center> </td>  <td VALIGN=TOP WIDTH="25%">     <center><font face="Arial,Helvetica"><font size=-1>30&plusmn;1.4</font></font></center> </td> </tr>  <tr> <td VALIGN=TOP WIDTH="25%">     ]]></body>
<body><![CDATA[<center><font face="Arial,Helvetica"><font size=-1>NH3(mg/l)</font></font></center> </td>  <td VALIGN=TOP WIDTH="25%">     <center><font face="Arial,Helvetica"><font size=-1>1.7&plusmn;0.021</font></font></center> </td>  <td VALIGN=TOP WIDTH="25%">     <center><font face="Arial,Helvetica"><font size=-1>1.5&plusmn;0.03</font></font></center> </td>  <td VALIGN=TOP WIDTH="25%">     <center><font face="Arial,Helvetica"><font size=-1>1.9&plusmn;0.02</font></font></center> </td> </tr>  <tr> <td VALIGN=TOP WIDTH="25%">     <center><font face="Arial,Helvetica"><font size=-1>NO2 (mg)l)</font></font></center> </td>  <td VALIGN=TOP WIDTH="25%">     <center><font face="Arial,Helvetica"><font size=-1>0.125&plusmn;0.001</font></font></center> </td>  <td VALIGN=TOP WIDTH="25%">     <center><font face="Arial,Helvetica"><font size=-1>0.148&plusmn;0.003</font></font></center> </td>  <td VALIGN=TOP WIDTH="25%">     <center><font face="Arial,Helvetica"><font size=-1>0.124&plusmn;0.001</font></font></center> </td> </tr>  <tr> <td VALIGN=TOP WIDTH="25%">     <center><font face="Arial,Helvetica"><font size=-1>NO3 (mg/l)</font></font></center> </td>  <td VALIGN=TOP WIDTH="25%">     <center><font face="Arial,Helvetica"><font size=-1>1.9&plusmn;0.010</font></font></center> </td>  <td VALIGN=TOP WIDTH="25%">     ]]></body>
<body><![CDATA[<center><font face="Arial,Helvetica"><font size=-1>1.8&plusmn;0.02</font></font></center> </td>  <td VALIGN=TOP WIDTH="25%">     <center><font face="Arial,Helvetica"><font size=-1>3.8&plusmn;0.02</font></font></center> </td> </tr>  <tr> <td VALIGN=TOP WIDTH="25%">     <center><font face="Arial,Helvetica"><font size=-1>PO4 (mg/l)</font></font></center> </td>  <td VALIGN=TOP WIDTH="25%">     <center><font face="Arial,Helvetica"><font size=-1>1&plusmn;0.050</font></font></center> </td>  <td VALIGN=TOP WIDTH="25%">     <center><font face="Arial,Helvetica"><font size=-1>0.5&plusmn;0.01</font></font></center> </td>  <td VALIGN=TOP WIDTH="25%">     <center><font face="Arial,Helvetica"><font size=-1>1&plusmn;0.001</font></font></center> </td> </tr>  <tr> <td VALIGN=TOP WIDTH="25%">     <center><font face="Arial,Helvetica"><font size=-1>SO4 (mg/l)</font></font></center> </td>  <td VALIGN=TOP WIDTH="25%">     <center><font face="Arial,Helvetica"><font size=-1>100&plusmn;13</font></font></center> </td>  <td VALIGN=TOP WIDTH="25%">     <center><font face="Arial,Helvetica"><font size=-1>84&plusmn;12</font></font></center> </td>  <td VALIGN=TOP WIDTH="25%">     <center><font face="Arial,Helvetica"><font size=-1>98&plusmn;17</font></font></center> </td> </tr>  <tr> <td VALIGN=TOP WIDTH="25%">     ]]></body>
<body><![CDATA[<center><font face="Arial,Helvetica"><font size=-1>Turbidez (UTF)</font></font></center> </td>  <td VALIGN=TOP WIDTH="25%">     <center><font face="Arial,Helvetica"><font size=-1>280&plusmn;27</font></font></center> </td>  <td VALIGN=TOP WIDTH="25%">     <center><font face="Arial,Helvetica"><font size=-1>310&plusmn;23</font></font></center> </td>  <td VALIGN=TOP WIDTH="25%">     <center><font face="Arial,Helvetica"><font size=-1>375&plusmn;57</font></font></center> </td> </tr>  <tr> <td VALIGN=TOP WIDTH="25%">     <center><font face="Arial,Helvetica"><font size=-1>S&oacute;lidos suspendidos (mg/l)</font></font></center> </td>  <td VALIGN=TOP WIDTH="25%">     <center><font face="Arial,Helvetica"><font size=-1>15&plusmn;2</font></font></center> </td>  <td VALIGN=TOP WIDTH="25%">     <center><font face="Arial,Helvetica"><font size=-1>70&plusmn;7</font></font></center> </td>  <td VALIGN=TOP WIDTH="25%">     <center><font face="Arial,Helvetica"><font size=-1>103&plusmn;15</font></font></center> </td> </tr>  <tr> <td VALIGN=TOP WIDTH="25%">     <center><font face="Arial,Helvetica"><font size=-1>Color (mg Pt/l)</font></font></center> </td>  <td VALIGN=TOP WIDTH="25%">     <center><font face="Arial,Helvetica"><font size=-1>950&plusmn;38</font></font></center> </td>  <td VALIGN=TOP WIDTH="25%">     ]]></body>
<body><![CDATA[<center><font face="Arial,Helvetica"><font size=-1>1150&plusmn;42</font></font></center> </td>  <td VALIGN=TOP WIDTH="25%">     <center><font face="Arial,Helvetica"><font size=-1>1003&plusmn;447</font></font></center> </td> </tr>  <tr> <td VALIGN=TOP WIDTH="25%">     <center><font face="Arial,Helvetica"><font size=-1>pH</font></font></center> </td>  <td VALIGN=TOP WIDTH="25%">     <center><font face="Arial,Helvetica"><font size=-1>6.7&plusmn;0.02</font></font></center> </td>  <td VALIGN=TOP WIDTH="25%">     <center><font face="Arial,Helvetica"><font size=-1>6.6&plusmn;0.4</font></font></center> </td>  <td VALIGN=TOP WIDTH="25%">     <center><font face="Arial,Helvetica"><font size=-1>6.6&plusmn;0.9</font></font></center> </td> </tr>  <tr> <td VALIGN=TOP WIDTH="25%">     <center><font face="Arial,Helvetica"><font size=-1>Conductividad (&micro;S/cm)</font></font></center> </td>  <td VALIGN=TOP WIDTH="25%">     <center><font face="Arial,Helvetica"><font size=-1>260&plusmn;15</font></font></center> </td>  <td VALIGN=TOP WIDTH="25%">     <center><font face="Arial,Helvetica"><font size=-1>285&plusmn;25</font></font></center> </td>  <td VALIGN=TOP WIDTH="25%">     <center><font face="Arial,Helvetica"><font size=-1>285&plusmn;0.9</font></font></center> </td> </tr>  <tr> <td VALIGN=TOP WIDTH="25%">     ]]></body>
<body><![CDATA[<center><font face="Arial,Helvetica"><font size=-1>Ox&iacute;geno disuelto (mg/l)</font></font></center> </td>  <td VALIGN=TOP WIDTH="25%">     <center><font face="Arial,Helvetica"><font size=-1>6.4&plusmn;0.005</font></font></center> </td>  <td VALIGN=TOP WIDTH="25%">     <center><font face="Arial,Helvetica"><font size=-1>6.1&plusmn;0.003</font></font></center> </td>  <td VALIGN=TOP WIDTH="25%">     <center><font face="Arial,Helvetica"><font size=-1>6.0&plusmn;0.006</font></font></center> </td> </tr>  <tr> <td VALIGN=TOP WIDTH="25%">     <center><font face="Arial,Helvetica"><font size=-1>Temperatura (&deg;C)</font></font></center> </td>  <td VALIGN=TOP WIDTH="25%">     <center><font face="Arial,Helvetica"><font size=-1>17&plusmn;0.91</font></font></center> </td>  <td VALIGN=TOP WIDTH="25%">     <center><font face="Arial,Helvetica"><font size=-1>17.4&plusmn;0.81</font></font></center> </td>  <td VALIGN=TOP WIDTH="25%">     <center><font face="Arial,Helvetica"><font size=-1>16.8&plusmn;0.88</font></font></center> </td> </tr> </table></center> <font face="Arial,Helvetica"><font size=-1>Cada valor representa el promedio de 3 cuantificaciones &plusmn;desviaci&oacute;n estandar</font></font>     <br><font size=-1></font>&nbsp;     <p>    ]]></body>
<body><![CDATA[<br><font size=-1></font>     <center>     <p><a NAME="CUADRO2"></a><font face="Arial,Helvetica"><font size=-1>CUADRO 2</font></font>     <br><font face="Arial,Helvetica"><font size=-1>Composici&oacute;n del fitoplancton de la presa Ignacio Ram&iacute;rez</font></font></center>      <br><font size=-1></font>&nbsp;     <center><table BORDER=0 CELLSPACING=0 CELLPADDING=4 WIDTH="571" >     <tr>     <td VALIGN=TOP WIDTH="31%"><font face="Arial,Helvetica"><font size=-1>Especies</font></font></td>     <td VALIGN=TOP WIDTH="26%"><font face="Arial,Helvetica"><font size=-1>Sitio     1</font></font></td>     ]]></body>
<body><![CDATA[<td VALIGN=TOP WIDTH="21%"><font face="Arial,Helvetica"><font size=-1>Sitio     2</font></font></td>     <td VALIGN=TOP WIDTH="21%"><font face="Arial,Helvetica"><font size=-1>Sitio     3</font></font></td>     </tr>     <tr>     <td VALIGN=TOP WIDTH="31%"><font face="Arial,Helvetica"><font size=-1>Ankistrodesmus     combolutus</font></font></td>     <td VALIGN=TOP WIDTH="26%"><font face="Arial,Helvetica"><font size=-1>0.13&plusmn;0.052</font></font></td>     <td VALIGN=TOP WIDTH="21%"><font face="Arial,Helvetica"><font size=-1>0</font></font></td>     ]]></body>
<body><![CDATA[<td VALIGN=TOP WIDTH="21%"><font face="Arial,Helvetica"><font size=-1>0</font></font></td>     </tr>     <tr>     <td VALIGN=TOP WIDTH="31%"><font face="Arial,Helvetica"><font size=-1>Chlorella     ellipsoides</font></font></td>     <td VALIGN=TOP WIDTH="26%"><font face="Arial,Helvetica"><font size=-1>0</font></font></td>     <td VALIGN=TOP WIDTH="21%"><font face="Arial,Helvetica"><font size=-1>0</font></font></td>     <td VALIGN=TOP WIDTH="21%"><font face="Arial,Helvetica"><font size=-1>0.8&plusmn;0.0066</font></font></td>     </tr>     <tr>     ]]></body>
<body><![CDATA[<td VALIGN=TOP WIDTH="31%"><font face="Arial,Helvetica"><font size=-1>Franceia     droescheri</font></font></td>     <td VALIGN=TOP WIDTH="26%"><font face="Arial,Helvetica"><font size=-1>0.22&plusmn;0.085</font></font></td>     <td VALIGN=TOP WIDTH="21%"><font face="Arial,Helvetica"><font size=-1>0</font></font></td>     <td VALIGN=TOP WIDTH="21%"><font face="Arial,Helvetica"><font size=-1>1.7&plusmn;0.044</font></font></td>     </tr>     <tr>     <td VALIGN=TOP WIDTH="31%"><font face="Arial,Helvetica"><font size=-1>Oocystis     ellipsoidea</font></font></td>     <td VALIGN=TOP WIDTH="26%"><font face="Arial,Helvetica"><font size=-1>6.71&plusmn;0.92</font></font></td>     ]]></body>
<body><![CDATA[<td VALIGN=TOP WIDTH="21%"><font face="Arial,Helvetica"><font size=-1>0</font></font></td>     <td VALIGN=TOP WIDTH="21%"><font face="Arial,Helvetica"><font size=-1>4.45&plusmn;0.87</font></font></td>     </tr>     <tr>     <td VALIGN=TOP WIDTH="31%"><font face="Arial,Helvetica"><font size=-1>Ulothrix     subtilissima</font></font></td>     <td VALIGN=TOP WIDTH="26%"><font face="Arial,Helvetica"><font size=-1>8.44&plusmn;0.99</font></font></td>     <td VALIGN=TOP WIDTH="21%"><font face="Arial,Helvetica"><font size=-1>17.57&plusmn;3.25</font></font></td>     <td VALIGN=TOP WIDTH="21%"><font face="Arial,Helvetica"><font size=-1>24.31&plusmn;1.56</font></font></td>     </tr>     ]]></body>
<body><![CDATA[<tr>     <td VALIGN=TOP WIDTH="31%"><font face="Arial,Helvetica"><font size=-1>Cyclotella     glomerasa</font></font></td>     <td VALIGN=TOP WIDTH="26%"><font face="Arial,Helvetica"><font size=-1>0</font></font></td>     <td VALIGN=TOP WIDTH="21%"><font face="Arial,Helvetica"><font size=-1>0</font></font></td>     <td VALIGN=TOP WIDTH="21%"><font face="Arial,Helvetica"><font size=-1>34.31&plusmn;1.56</font></font></td>     </tr>     <tr>     <td VALIGN=TOP WIDTH="31%"><font face="Arial,Helvetica"><font size=-1>Denticula     tenuis</font></font></td>     ]]></body>
<body><![CDATA[<td VALIGN=TOP WIDTH="26%"><font face="Arial,Helvetica"><font size=-1>0</font></font></td>     <td VALIGN=TOP WIDTH="21%"><font face="Arial,Helvetica"><font size=-1>0</font></font></td>     <td VALIGN=TOP WIDTH="21%"><font face="Arial,Helvetica"><font size=-1>8.57&plusmn;1.12</font></font></td>     </tr>     <tr>     <td VALIGN=TOP WIDTH="31%"><font face="Arial,Helvetica"><font size=-1>Fragilaria     pinnata</font></font></td>     <td VALIGN=TOP WIDTH="26%"><font face="Arial,Helvetica"><font size=-1>0.14&plusmn;0.0025</font></font></td>     <td VALIGN=TOP WIDTH="21%"><font face="Arial,Helvetica"><font size=-1>0</font></font></td>     <td VALIGN=TOP WIDTH="21%"><font face="Arial,Helvetica"><font size=-1>0</font></font></td>     ]]></body>
<body><![CDATA[</tr>     <tr>     <td VALIGN=TOP WIDTH="31%"><font face="Arial,Helvetica"><font size=-1>Melosira     italica</font></font></td>     <td VALIGN=TOP WIDTH="26%"><font face="Arial,Helvetica"><font size=-1>0.79&plusmn;0.0047</font></font></td>     <td VALIGN=TOP WIDTH="21%"><font face="Arial,Helvetica"><font size=-1>2.26&plusmn;0.52</font></font></td>     <td VALIGN=TOP WIDTH="21%"><font face="Arial,Helvetica"><font size=-1>1.71&plusmn;0.098</font></font></td>     </tr>     <tr>     <td VALIGN=TOP WIDTH="31%"><font face="Arial,Helvetica"><font size=-1>Navicula     ]]></body>
<body><![CDATA[dicephala</font></font></td>     <td VALIGN=TOP WIDTH="26%"><font face="Arial,Helvetica"><font size=-1>0.08&plusmn;0.0065</font></font></td>     <td VALIGN=TOP WIDTH="21%"><font face="Arial,Helvetica"><font size=-1>10.48&plusmn;2.33</font></font></td>     <td VALIGN=TOP WIDTH="21%"><font face="Arial,Helvetica"><font size=-1>0</font></font></td>     </tr>     <tr>     <td VALIGN=TOP WIDTH="31%"><font face="Arial,Helvetica"><font size=-1>Stephanodiscus     astreaa</font></font></td>     <td VALIGN=TOP WIDTH="26%"><font face="Arial,Helvetica"><font size=-1>10.55&plusmn;1.002</font></font></td>     <td VALIGN=TOP WIDTH="21%"><font face="Arial,Helvetica"><font size=-1>15.61&plusmn;1.77</font></font></td>     ]]></body>
<body><![CDATA[<td VALIGN=TOP WIDTH="21%"><font face="Arial,Helvetica"><font size=-1>1.71&plusmn;0.098</font></font></td>     </tr>     <tr>     <td VALIGN=TOP WIDTH="31%"><font face="Arial,Helvetica"><font size=-1>Chroococus     minimus</font></font></td>     <td VALIGN=TOP WIDTH="26%"><font face="Arial,Helvetica"><font size=-1>0</font></font></td>     <td VALIGN=TOP WIDTH="21%"><font face="Arial,Helvetica"><font size=-1>0</font></font></td>     <td VALIGN=TOP WIDTH="21%"><font face="Arial,Helvetica"><font size=-1>01.71&plusmn;0.004</font></font></td>     </tr>     <tr>     ]]></body>
<body><![CDATA[<td VALIGN=TOP WIDTH="31%"><font face="Arial,Helvetica"><font size=-1>Chroococus     minor</font></font></td>     <td VALIGN=TOP WIDTH="26%"><font face="Arial,Helvetica"><font size=-1>64.23&plusmn;12.3</font></font></td>     <td VALIGN=TOP WIDTH="21%"><font face="Arial,Helvetica"><font size=-1>14.55&plusmn;0.91</font></font></td>     <td VALIGN=TOP WIDTH="21%"><font face="Arial,Helvetica"><font size=-1>0</font></font></td>     </tr>     <tr>     <td VALIGN=TOP WIDTH="31%"><font face="Arial,Helvetica"><font size=-1>Dactylococcopsis     acicularis</font></font></td>     <td VALIGN=TOP WIDTH="26%"><font face="Arial,Helvetica"><font size=-1>0.2&plusmn;0.058</font></font></td>     ]]></body>
<body><![CDATA[<td VALIGN=TOP WIDTH="21%"><font face="Arial,Helvetica"><font size=-1>12.29&plusmn;0.57</font></font></td>     <td VALIGN=TOP WIDTH="21%"><font face="Arial,Helvetica"><font size=-1>0</font></font></td>     </tr>     <tr>     <td VALIGN=TOP WIDTH="31%"><font face="Arial,Helvetica"><font size=-1>Marsoniella     elegans</font></font></td>     <td VALIGN=TOP WIDTH="26%"><font face="Arial,Helvetica"><font size=-1>0.23&plusmn;0.21</font></font></td>     <td VALIGN=TOP WIDTH="21%"><font face="Arial,Helvetica"><font size=-1>0</font></font></td>     <td VALIGN=TOP WIDTH="21%"><font face="Arial,Helvetica"><font size=-1>0</font></font></td>     </tr>     ]]></body>
<body><![CDATA[<tr>     <td VALIGN=TOP WIDTH="31%"><font face="Arial,Helvetica"><font size=-1>Nostoc     caerolum</font></font></td>     <td VALIGN=TOP WIDTH="26%"><font face="Arial,Helvetica"><font size=-1>0.46&plusmn;0.098</font></font></td>     <td VALIGN=TOP WIDTH="21%"><font face="Arial,Helvetica"><font size=-1>0</font></font></td>     <td VALIGN=TOP WIDTH="21%"><font face="Arial,Helvetica"><font size=-1>0.24&plusmn;0.0008</font></font></td>     </tr>     <tr>     <td VALIGN=TOP WIDTH="31%"><font face="Arial,Helvetica"><font size=-1>Oscillatoria     articulata</font></font></td>     ]]></body>
<body><![CDATA[<td VALIGN=TOP WIDTH="26%"><font face="Arial,Helvetica"><font size=-1>0.43&plusmn;0.025</font></font></td>     <td VALIGN=TOP WIDTH="21%"><font face="Arial,Helvetica"><font size=-1>8.44&plusmn;0.25</font></font></td>     <td VALIGN=TOP WIDTH="21%"><font face="Arial,Helvetica"><font size=-1>3.95&plusmn;0.054</font></font></td>     </tr>     <tr>     <td VALIGN=TOP WIDTH="31%"><font face="Arial,Helvetica"><font size=-1>Oscillatoria     limnetica</font></font></td>     <td VALIGN=TOP WIDTH="26%"><font face="Arial,Helvetica"><font size=-1>0</font></font></td>     <td VALIGN=TOP WIDTH="21%"><font face="Arial,Helvetica"><font size=-1>10.93&plusmn;9.11</font></font></td>     <td VALIGN=TOP WIDTH="21%"><font face="Arial,Helvetica"><font size=-1>8.06&plusmn;0.078</font></font></td>     ]]></body>
<body><![CDATA[</tr>     <tr>     <td VALIGN=TOP WIDTH="31%"><font face="Arial,Helvetica"><font size=-1>Oscillatoria     limosa</font></font></td>     <td VALIGN=TOP WIDTH="26%"><font face="Arial,Helvetica"><font size=-1>0</font></font></td>     <td VALIGN=TOP WIDTH="21%"><font face="Arial,Helvetica"><font size=-1>&nbsp;</font></font></td>     <td VALIGN=TOP WIDTH="21%"><font face="Arial,Helvetica"><font size=-1>3.17&plusmn;0.0022</font></font></td>     </tr>     <tr>     <td VALIGN=TOP WIDTH="31%"><font face="Arial,Helvetica"><font size=-1>Spirulina     ]]></body>
<body><![CDATA[laxa</font></font></td>     <td VALIGN=TOP WIDTH="26%"><font face="Arial,Helvetica"><font size=-1>4.563&plusmn;1.23</font></font></td>     <td VALIGN=TOP WIDTH="21%"><font face="Arial,Helvetica"><font size=-1>0</font></font></td>     <td VALIGN=TOP WIDTH="21%"><font face="Arial,Helvetica"><font size=-1>0</font></font></td>     </tr>     <tr>     <td VALIGN=TOP WIDTH="31%"><font face="Arial,Helvetica"><font size=-1>Synechococcus     aeruginosa</font></font></td>     <td VALIGN=TOP WIDTH="26%"><font face="Arial,Helvetica"><font size=-1>0.723&plusmn;0.68</font></font></td>     <td VALIGN=TOP WIDTH="21%"><font face="Arial,Helvetica"><font size=-1>0</font></font></td>     ]]></body>
<body><![CDATA[<td VALIGN=TOP WIDTH="21%"><font face="Arial,Helvetica"><font size=-1>0</font></font></td>     </tr>     <tr>     <td VALIGN=TOP WIDTH="31%"><font face="Arial,Helvetica"><font size=-1>Lepocynclis     sphagnophia</font></font></td>     <td VALIGN=TOP WIDTH="26%"><font face="Arial,Helvetica"><font size=-1>1.953&plusmn;0.057</font></font></td>     <td VALIGN=TOP WIDTH="21%"><font face="Arial,Helvetica"><font size=-1>0</font></font></td>     <td VALIGN=TOP WIDTH="21%"><font face="Arial,Helvetica"><font size=-1>1.9&plusmn;0.0033</font></font></td>     </tr>     </table></center>     ]]></body>
<body><![CDATA[<center><font face="Arial,Helvetica"><font size=-1>Cada valor representa el promedio de 3 cuantificaciones &plusmn; desviaci&oacute;n estandar</font></font></center>      <br><font size=-1></font>&nbsp;     <p>    <br><font size=-1></font>     <p><font face="Arial,Helvetica"><font size=-1>La comunidad fitoplanct&oacute;nica estuvo dominada por diez especies de las cuales las bacilllarioficeas <i>Stephanodiscus astraea </i>y<i> Melosira italica</i> fueron los componentes importantes de este grupo; entre las clorof&iacute;ceas se encontraron <i>Ulothrix subtilissima </i>y<i> Oocystis ellipsoidea</i>, mientras que la cianoficea de mayor importancia fue <i>Chroococcus minor </i>(<a href="#CUADRO2">Cuadro 2</a>).</font></font><font size=-1></font>     <p><font face="Arial,Helvetica"><font size=-1>Con respecto al zooplancton se observ&oacute; un predominio de especies de clad&oacute;ceros sobre los cop&eacute;podos y una escasa representaci&oacute;n de los rot&iacute;feros. Entre los clad&oacute;ceros <i>Bosmina longirostris</i> fue la especie que contribuy&oacute; con las mayores densidades, mientras que entre los cop&eacute;podos fue <i>Diaptomus montezumae </i>el de mayor<i> dens</i>idad (<a href="#CUADRO3">Cuadro 3</a>).</font></font>     <br><font size=-1></font>&nbsp;     <p>    <br><font size=-1></font>     <center>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><a NAME="CUADRO3"></a><font face="Arial,Helvetica"><font size=-1>CUADRO 3</font></font>     <br><font face="Arial,Helvetica"><font size=-1>Comunidad del zooplancton en la presa Ignacio Ram&iacute;rez</font></font></center>      <br><font size=-1></font>&nbsp;     <center><table BORDER=0 CELLSPACING=0 CELLPADDING=4 WIDTH="598" > <tr> <td VALIGN=TOP WIDTH="25%"><font face="Arial,Helvetica"><font size=-1>&nbsp;</font></font></td>  <td VALIGN=TOP WIDTH="25%">     <center><font face="Arial,Helvetica"><font size=-1>Sitio 1 (%)</font></font></center> </td>  <td VALIGN=TOP WIDTH="25%">     <center><font face="Arial,Helvetica"><font size=-1>Sitio 2 (%)</font></font></center> </td>  <td VALIGN=TOP WIDTH="25%">     <center><font face="Arial,Helvetica"><font size=-1>Sitio 3 (%)</font></font></center> </td> </tr>  <tr> <td VALIGN=TOP WIDTH="25%">     <center><font face="Arial,Helvetica"><font size=-1>Nauplios</font></font></center> </td>  <td VALIGN=TOP WIDTH="25%">     <center><font face="Arial,Helvetica"><font size=-1>4.22&plusmn;1.2</font></font></center> </td>  <td VALIGN=TOP WIDTH="25%">     <center><font face="Arial,Helvetica"><font size=-1>13.79&plusmn;2.1</font></font></center> </td>  <td VALIGN=TOP WIDTH="25%">     ]]></body>
<body><![CDATA[<center><font face="Arial,Helvetica"><font size=-1>19.96&plusmn;2.5</font></font></center> </td> </tr>  <tr> <td VALIGN=TOP WIDTH="25%">     <center><font face="Arial,Helvetica"><font size=-1>Rot&iacute;feros</font></font></center> </td>  <td VALIGN=TOP WIDTH="25%">     <center><font face="Arial,Helvetica"><font size=-1>0.39&plusmn;0.07</font></font></center> </td>  <td VALIGN=TOP WIDTH="25%">     <center><font face="Arial,Helvetica"><font size=-1>0.22&plusmn;.0.03</font></font></center> </td>  <td VALIGN=TOP WIDTH="25%">     <center><font face="Arial,Helvetica"><font size=-1>1.66&plusmn;0.07</font></font></center> </td> </tr>  <tr> <td VALIGN=TOP WIDTH="25%">     <center><font face="Arial,Helvetica"><font size=-1>Cop&eacute;podos</font></font></center> </td>  <td VALIGN=TOP WIDTH="25%">     <center><font face="Arial,Helvetica"><font size=-1>37.06&plusmn;1.2</font></font></center> </td>  <td VALIGN=TOP WIDTH="25%">     <center><font face="Arial,Helvetica"><font size=-1>15.57&plusmn;2.1</font></font></center> </td>  <td VALIGN=TOP WIDTH="25%">     <center><font face="Arial,Helvetica"><font size=-1>14.44&plusmn;2.1</font></font></center> </td> </tr>  <tr> <td VALIGN=TOP WIDTH="25%">     <center><font face="Arial,Helvetica"><font size=-1>Clad&oacute;ceros</font></font></center> </td>  <td VALIGN=TOP WIDTH="25%">     ]]></body>
<body><![CDATA[<center><font face="Arial,Helvetica"><font size=-1>58.32&plusmn;3.5</font></font></center> </td>  <td VALIGN=TOP WIDTH="25%">     <center><font face="Arial,Helvetica"><font size=-1>70.42&plusmn;4.5</font></font></center> </td>  <td VALIGN=TOP WIDTH="25%">     <center><font face="Arial,Helvetica"><font size=-1>63.94&plusmn;7.2</font></font></center> </td> </tr> </table></center> <font face="Arial,Helvetica"><font size=-1>Cada valor representa el promedio de 3 cuantificaciones &plusmn; desviaci&oacute;n estandar</font></font>     <br><font size=-1></font>&nbsp;     <br><font size=-1></font>&nbsp;<font size=-1></font>     <p><font face="Arial,Helvetica"><font size=-1>La comunidad &iacute;ctica del sistema cuenta con una especie de charal end&eacute;mica de la cuenca, <i>Chirosoma riojai</i> y un godeido nativo <i>Gyrardinichtys multiradiatus</i>. Adem&aacute;s se han introducido especies de carpas <i>Cyprinus carpio </i>y<i> Carrassius auratus</i> que en conjunto con el charal son sometidas a pesca y consumo local.</font></font><font size=-1></font>     <p><font face="Arial,Helvetica"><font size=-1>En este estudio se determin&oacute; la letalidad del agua de diferentes lugares de la PIR sobre el clad&oacute;cero. Los 3 sitios present&aacute;n actividad t&oacute;xica, sin embargo el sitio 2 es el m&aacute;s contaminado, ya que el valor de la CL<sub>50</sub> fue menor que en los otros puntos de muestreo (<a href="#CUADRO4">Cuadro 4</a>) .</font></font><font size=-1></font>     <p><font face="Arial,Helvetica"><font size=-1>El valor de la CL<sub>50 </sub>24 h del DDT y del CLO (disueltos en agua reconstituida) en <i>D. magna</i> , muestran que este &uacute;ltimo compuesto es 4.6 veces m&aacute;s t&oacute;xico que el primero (<a href="#CUADRO4">Cuadro 4 </a>).</font></font><font size=-1></font>     <p><font face="Arial,Helvetica"><font size=-1>El efecto letal producido por los plaguicidas organoclorados se observ&oacute; modificado cuando &eacute;stos fueron adicionados al agua de la presa. La toxicidad del DDT disminuy&oacute; en 169, 70.28 y 11.45 % en los sitios 1, 2 y 3 respectivamente (Duncan p&lt;0.05)(<a href="#CUADRO4">Cuadro 4</a>). As&iacute; mismo la letalidad de estas muestras de agua pero con el CLO, se observ&oacute; un decremento de 11.36, 7.27 y 4.36 veces respectivamente con respecto al control (Duncan p&lt;0.05) (<a href="#CUADRO4">Cuadro 4</a>).</font></font><font size=-1></font>     <p>    ]]></body>
<body><![CDATA[<br><font size=-1></font>     <br><font size=-1></font>     <center>     <p><a NAME="CUADRO4"></a><font face="Arial,Helvetica"><font size=-1>CUADRO 4</font></font>     <br><font face="Arial,Helvetica"><font size=-1>Toxicidad aguda (CL50 a 24 hr) del DDT y clordano</font></font>     <br><font face="Arial,Helvetica"><font size=-1>sobre Daphniasmagna, expuesta al agua de la presa</font></font>     <br><font face="Arial,Helvetica"><font size=-1>Ignacio Ram&iacute;rez sembrada con los insecticidas.</font></font></center>      <br><font size=-1></font>&nbsp;     <br><font size=-1></font>&nbsp; <table BORDER=0 CELLSPACING=0 CELLPADDING=4 WIDTH="674" > <tr> <td VALIGN=TOP WIDTH="25%">     <center><font face="Arial,Helvetica"><font size=-1>Sitio de muestreo</font></font></center> </td>  <td VALIGN=TOP WIDTH="25%">     ]]></body>
<body><![CDATA[<center><font face="Arial,Helvetica"><font size=-1>DDT (mg/l)</font></font></center> </td>  <td VALIGN=TOP WIDTH="25%">     <center><font face="Arial,Helvetica"><font size=-1>Clordano (mg/l)</font></font></center> </td>  <td VALIGN=TOP WIDTH="25%">     <center><font face="Arial,Helvetica"><font size=-1>Agua de la PIR sin xenobi&oacute;tico (%)</font></font></center> </td> </tr>  <tr> <td VALIGN=TOP WIDTH="25%">     <center><font face="Arial,Helvetica"><font size=-1>Agua de cultivo</font></font></center> </td>  <td VALIGN=TOP WIDTH="25%">     <center><font face="Arial,Helvetica"><font size=-1>0.01013&plusmn;0.009</font></font></center> </td>  <td VALIGN=TOP WIDTH="25%">     <center><font face="Arial,Helvetica"><font size=-1>0.0022&plusmn;0.0005</font></font></center> </td>  <td VALIGN=TOP WIDTH="25%">     <center><font face="Arial,Helvetica"><font size=-1>0</font></font></center> </td> </tr>  <tr> <td VALIGN=TOP WIDTH="25%">     <center><font face="Arial,Helvetica"><font size=-1>1</font></font></center> </td>  <td VALIGN=TOP WIDTH="25%">     <center><font face="Arial,Helvetica"><font size=-1>0.02727&plusmn;0.0015</font></font></center> </td>  <td VALIGN=TOP WIDTH="25%">     <center><font face="Arial,Helvetica"><font size=-1>0.02503&plusmn;0.007</font></font></center> </td>  <td VALIGN=TOP WIDTH="25%">     ]]></body>
<body><![CDATA[<center><font face="Arial,Helvetica"><font size=-1>83.78&plusmn;3.5</font></font></center> </td> </tr>  <tr> <td VALIGN=TOP WIDTH="25%">     <center><font face="Arial,Helvetica"><font size=-1>2</font></font></center> </td>  <td VALIGN=TOP WIDTH="25%">     <center><font face="Arial,Helvetica"><font size=-1>0.01725&plusmn;0.0009</font></font></center> </td>  <td VALIGN=TOP WIDTH="25%">     <center><font face="Arial,Helvetica"><font size=-1>0.01621&plusmn;0.006</font></font></center> </td>  <td VALIGN=TOP WIDTH="25%">     <center><font face="Arial,Helvetica"><font size=-1>74.13&plusmn;4.1</font></font></center> </td> </tr>  <tr> <td VALIGN=TOP WIDTH="25%">     <center><font face="Arial,Helvetica"><font size=-1>3</font></font></center> </td>  <td VALIGN=TOP WIDTH="25%">     <center><font face="Arial,Helvetica"><font size=-1>0.01129&plusmn;0.0008</font></font></center> </td>  <td VALIGN=TOP WIDTH="25%">     <center><font face="Arial,Helvetica"><font size=-1>0.0096&plusmn;0.0008</font></font></center> </td>  <td VALIGN=TOP WIDTH="25%">     <center><font face="Arial,Helvetica"><font size=-1>80.53&plusmn;2.8</font></font></center> </td> </tr> </table> <font face="Arial,Helvetica"><font size=-1>Cada valor representa el promedio de 3 cuantificaciones &plusmn; desviaci&oacute;n estandar</font></font>     <br><font face="Arial,Helvetica"><font size=-1></font></font>&nbsp;<font size=-1></font>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><font face="Arial,Helvetica"><font size=-1>En los organismos expuestos a las diferentes muestras de agua de los sitios seleccionados de la PIR, se increment&oacute; la actividad de la AchA hasta un 13.43 % (sitio 1) (Duncan p&lt;0.05) (<a href="#fig1">Fig. 1 A</a>), sin embargo, en los clad&oacute;cero intoxicados &uacute;nicamente con DDT o CLO, la actividad de esta enzima fue inhibida en 13.1 y 18.03% respectivamente (Duncan, p&lt;0.05). El efecto del agua de los diferentes sitios de la presa contaminada con los insecticidas sobre la AchA, no fue significativo con respecto al control (agua reconstituida con el plagucida), pero al compararlo con el agua de la PIR sin insecticidas si tuvo significancia (p&lt;0.05) (<a href="#fig1">Fig. 1 A</a>).</font></font><font size=-1></font>     <p><font face="Arial,Helvetica"><font size=-1>La producci&oacute;n de PNF aumento en 11.78 y 8.5% (Duncan p&lt;0.05) (<a href="#fig1">Fig. 1 B</a>), cuando el PNA fue incubado con el homogeneizado de clad&oacute;cero expuesto a los sitios 2 y 3, sin embargo, este metabolito disminuy&oacute; 14.28% (Duncan p&lt;0.05) (<a href="#fig1">Fig. 1 B</a>) en los clad&oacute;ceros expuestos al agua del sitio 1 de la presa (<a href="#fig1">Fig. 1 B</a>)</font></font><font size=-1></font>     <p><font face="Arial,Helvetica"><font size=-1>El homogeneizado de los organismos intoxicados &uacute;nicamente con el DDT o el CLO incrementaron en un 57.14% y 12.76% la biotransformaci&oacute;n del PNA (Duncan p&lt; 0.01) (<a href="#fig1">Fig. 1 B</a>). Este mismo efecto se observ&oacute; en los organismos expuestos al DDT disuelto en el agua de los sitios 1,2, y 3 de la PIR, el aumento fue de 5.19, 4, y 6.49% respectivamente (Duncan p&lt;0.05). As&iacute; mismo, en los clad&oacute;ceros expuestos al CLO disuelto en el agua de cada uno de los sitios en estudio el incremento en la formaci&oacute;n de PNF oscil&oacute; entre 7.23 a 10.98% (Duncan p&lt;0.05) ) (<a href="#fig1">Fig. 1 B</a>).</font></font>     <br><font size=-1></font>&nbsp;     <br><font size=-1></font>&nbsp;     <br><font size=-1></font>     <center>     <p><a NAME="fig1"></a><img SRC="/img/fbpe/rbt/v47n4/0394i1.GIF" height=668 width=338></center>      
<br><font size=-1></font>&nbsp;     <br><font size=-1></font>&nbsp;     ]]></body>
<body><![CDATA[<br><font size=-1></font>     <p><b><font face="Arial,Helvetica"><font size=-1>Discusi&oacute;n</font></font></b><font size=-1></font>     <p><font face="Arial,Helvetica"><font size=-1>De acuerdo con los registros de temperatura, la PIR es un cuerpo de agua sin estratificaci&oacute;n t&eacute;rmica, no presenta una t&eacute;rmoclina, a&uacute;n cuando se manifest&oacute; un peque&ntilde;o gradiente entre superficie y fondo, lo cual demuestra un intenso proceso de degradaci&oacute;n de materia org&aacute;nica con una alta demanda bioqu&iacute;mica (<a href="#CUADRO1">Cuadro 1</a>). El embalse posee aguas muy turbias, debido a la presencia de arcillas coloidales, que le confieren alta opacidad a la columna de agua. Los valores de carbonato sugieren que se trata de un sistema con aguas moderadamente duras (<a href="#Reid">Reid y Wood 1976</a>), probablemente por la disponibilidad de carbonatos de calcio, &eacute;sto permite un buen amortiguamiento de los iones hidr&oacute;geno en aguas duras y moderadamente duras (<a href="#Wetzel">Wetzel 1975</a>). Debido a que este cuerpo de agua recibe desechos industriales de una papelera, la concentraci&oacute;n de sulfatos en la columna de agua sobrepasan a los establecidos como permitidos para la vida acu&aacute;tica. Adem&aacute;s es necesario considerar que la cuenca de captaci&oacute;n del embalse se encuentra desforestada, lo cual contribuye a que la PIR reciba cantidades importantes de terr&iacute;genos en la temporada de lluvia por lo que se estima que la PIR posee una zona euf&oacute;tica muy reducida (<a href="#CUADRO1">Cuadro 1</a>). En las Cuadros <a href="#CUADRO2">2</a> y <a href="#CUADRO3">3</a>, se muestra que en los tres lugares de la PIR (1, 2 y 3) existen asociaciones de especies tanto del zooplanton como del fitoplanton que permiten considerar que la PIR es un cuerpo de agua con alto grado de eutroficaci&oacute;n.</font></font><font size=-1></font>     <p><font face="Arial,Helvetica"><font size=-1>La especie <i>D. magna</i>, es usada en los ensayos de letalidad para determinar las concentraciones permisibles de contaminantes y establecer el criterio de la calidad del efluente eliminado al sistema acu&aacute;tico (<a href="#Buikema">Buikema <i>et al.</i> 1982</a>). En este estudio, a&uacute;n cuando el valor de la CL<sub>50</sub> fue mayor para los sitios 1 y 3, no se puede concluir que estos lugares son inocuos para los hidrobiontes, debido a que la CL<sub>0</sub> del sitio 1 es igual a 0.0984 ml [calculada de la ecuaci&oacute;n Y=1.71881 + (1.70614 * X)], es decir que se requerir&aacute; diluir el agua de cada sitio en una relaci&oacute;n de 1:10,000 (v/v), para que ning&uacute;n clad&oacute;cero que habiten estos lugares muera. Estos resultados sugieren la presencia de xenobi&oacute;ticos disueltos en la columna de agua de la PIR, probablemente detergentes y plaguicidas. En los sitios de estudio confluyen diversos r&iacute;os, El Alomoloya, El Guajolata y el San Pedro mismos que residen en la cercan&iacute;a de la zona industrial de Toluca, lo cual puede contribuir a contaminar este embalse; as&iacute; mismo alrededor de la presa habitan aproximadamente 2 000 campesinos que emplean agroqu&iacute;micos para el cultivo del ma&iacute;z y haba, y liberan desechos urbanos (<a href="#Anónimo">An&oacute;nimo 1997</a>).</font></font><font size=-1></font>     <p><font face="Arial,Helvetica"><font size=-1>La toxicidad aguda del DDT y CLO, representada por la CL<sub>50</sub> muestra que ambos plaguicidas son extremadamente t&oacute;xicos para los organismos acu&aacute;ticos seg&uacute;n la clasificaci&oacute;n de <a href="#Metelev">Metelev <i>et al.</i> (1983)</a>. Sin embargo este efecto se observ&oacute; disminuido cuando &eacute;stos fueron adicionados al agua de la presa. Probablemente la presencia de otros xenobi&oacute;ticos disueltos en el agua de la PIR antagonizaron al efecto t&oacute;xico de los insecticidas, o tambi&eacute;n puede atribuirse a las propiedades fisicoqu&iacute;micas del embalse, ya que &eacute;stas pueden influir en la biodisponibilidad de estas sustancias. Estudios realizados por <a href="#Murphy">Murphy (1970)</a> demostraron que el contenido de sales puede cambiar la absorci&oacute;n del DDT, probablemente la cantidad de iones, sea el factor determinante, ya que el contenido de nitratos y turbiedad es grande en la estaci&oacute;n 3 (<a href="#CUADRO1">Cuadro 1</a>).</font></font><font size=-1></font>     <p><font face="Arial,Helvetica"><font size=-1>Otra explicaci&oacute;n a este efecto , ser&iacute;a que la PIR contiene metil-parati&oacute;n (<a href="#De la Vega">De la Vega <i>et al.</i>, 1997</a>), xenobi&oacute;tico que puede reducir los efectos del CLO. Estudios realizados por<a href="#Williams"> Williams <i>et al.</i> (1967)</a> demuestran que los compuestos organoclorados puede antagonizar los da&ntilde;os producidos por los plaguicidas carb&aacute;micos y organofosforados.</font></font><font size=-1></font>     <p><font face="Arial,Helvetica"><font size=-1>Son diferentes los biomarcadores del da&ntilde;o que se han empleado para evaluar la toxicidad del agua contaminada por xenobi&oacute;ticos (<a href="#Martínez91">Mart&iacute;nez-Tabche <i>et al.</i> 1991</a>, <a href="#Martínez92">1992</a>, <a href="#Martínez93">1993</a>, <a href="#Martínez94a">1994a</a> y <a href="#Martínez94b">b</a>, <a href="#Martínez95">1995</a>). En este estudio se evalu&oacute; la toxicidad del agua de los diferentes sitios de la PIR (1, 2 y 3) a trav&eacute;s de la actividad de la AchA y el de la OD. Con respecto a la AchA, los resultados mostraron que en los organismos expuestos &uacute;nicamente al agua de la presa se increment&oacute; la actividad de esta enzima (<a href="#fig1">Fig 1 A</a>), probablemente por efecto del para-nitrofenol, (metabolito del metil-parati&oacute;n), compuesto que se encontr&oacute; en concentraciones de 1.8 mg/l en el embalse (<a href="#De la Vega">De la Vega <i>et al.</i> 1997</a>). Estudios realizados por <a href="#Assem">Assem <i>et al.</i> (1989)</a> demostraron que las truchas expuestas a 33 &micro;g/l de fenoles la actividad de la AchA se elev&oacute; en forma importante. Otra causa ser&iacute;a por la presencia de Bo, Cd y Cu en la PIR, ya que se informa que estos metales pueden aumentar la actividad de esta enzima en diferentes organismos expuestos a estos contaminantes (<a href="#Hoffman">Hoffman <i>et al.</i> 1990</a>, <a href="#Gill">Gill <i>et al</i> .1991</a>, <a href="#Kufcsak">Kufcsak <i>et al.</i> 1994</a>).</font></font><font size=-1></font>     <p><font face="Arial,Helvetica"><font size=-1>Estudios realizados por <a href="#Olson">Olson y Christensen (1980)</a> muestran que los compuestos organoclorados como el aldr&iacute;n y dieldr&iacute;n reducen hasta el 50 % la actividad AchA del m&uacute;sculo del pez <i>Pimephales promela. </i>En este estudio se observ&oacute; que el DDT y CLO inhibieron la actividad de esta enzima . Este efecto probablemente se deba al enlace de los compuestos arom&aacute;ticos a los ligandos cuaternarios del sitio activo de la AchA (<a href="#Harel">Harel <i>et al.</i> 1993</a>). Sin embargo, el efecto del agua de los diferentes sitios de la presa contaminada con los insecticidas, no fue significativo con respecto al control (agua reconstituida con el plaguicida), lo cual sugiere que las sustancias disueltas en el agua est&aacute;n antagonizando el efecto que producen los insecticidas sobre la enzima (<a href="#fig1">Fig 1 A</a>). Estos resultados muestran nuevamente como las propiedades fisicoqu&iacute;micas del agua pueden modificar la respuesta t&oacute;xica de los xenobi&oacute;ticos.</font></font><font size=-1></font>     <p><font face="Arial,Helvetica"><font size=-1>La activaci&oacute;n e inducci&oacute;n de las enzimas que biotranforman a los xenobi&oacute;ticos es un efecto inmediato que puede ser ocasionado por diferentes sustancias (<a href="#Hodgson">Hodgson 1994</a>). En este estudio se observ&oacute; un incremento en la producci&oacute;n de PNF , cuando el PNA fue incubado con el homogeneizado del clad&oacute;cero expuesto a los sitios 2 y 3, probablemente porque en estos sitios est&aacute;n presentes sustancias como etilcionatos 2,2, biperidinas, hidrocarburos polic&iacute;clicos que pueden estimular el metabolimo de xenobi&oacute;ticos (<a href="#Hodgson">Hodgson 1994</a>). En el homogeneizado de los clad&oacute;ceros expuestos al agua del sitio 1 se observ&oacute; una disminuci&oacute;n de en la actividad de o-desmetilasa . El efecto de inhibici&oacute;n sobre la actividad metab&oacute;lica de microsomas hep&aacute;ticos subsecuentemente al exponer organismos a diferentes xenobi&oacute;ticos ha sido reportado, entre los que se pueden mencionar al cloruro de vinilo, isopropilacetamida. Estos xenobi&oacute;ticos destruyen las enzimas con p&eacute;rdida del citocromo P<sub>450</sub> (<a href="#Hodgson">Hodgson 1994</a>). Probablemente en este sitio de la PIR se encuentren estas sustancias disueltas en el agua.</font></font><font size=-1></font>     <p><font face="Arial,Helvetica"><font size=-1>A nivel ultraestructural el ret&iacute;culo endoplasmico tanto el rugoso como el liso prolifera al exponer a los organismos a bifenilos policlorados y DDT, efecto que est&aacute; asociado con la inducci&oacute;n de la actividad enzim&aacute;tica que biotransforma los xenobi&oacute;ticos. En este estudio se demostr&oacute; que concentraciones subletales de DDT incrementaron la biotransformacion del PNA (<a href="#fig1">Fig 1 B</a>) . En estudios realizados en larvas de <i>Chironomus riparius</i> expuestas al DDT se increment&oacute; la actividad de la glutation-transferasa y de la FMO (<a href="#Hoffman">Hoffman and Fisher 1994</a>).</font></font><font size=-1></font>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><font face="Arial,Helvetica"><font size=-1>Para los estudios con el CLO, el incremento en la actividad de la enzima fue menor que el observado con el DDT (<a href="#fig1">Fig 1 B</a>), probablemente porque ambos insecticidas actuan en forma diferente sobre la enzima. <a href="#Hart63">Hart <i>et al.</i> (1963)</a> y <a href="#Hart65">Hart and Fouts (1965)</a> reportan que el CLO induce no especificamente la actividad enzimatica de la fracci&oacute;n microsomal del h&iacute;gado de rata, posiblemente por el mismo mecanismo de acci&oacute;n que la induce el fenobarbital.</font></font><font size=-1></font>     <p><font face="Arial,Helvetica"><font size=-1>La biotransformaci&oacute;n del PNA en el homogeneizado de los organismos expuestos al DDT o CLO disueltos en el agua de los sitios de muestreo de la PIR se increment&oacute; con respecto a los controles de cada uno de los insecticidas. Estos resultados muestran que a&uacute;n cuando el homogeneizado del clad&oacute;cero expuesto al agua de la presa en presencia de ambos insecticidas no aument&oacute; en forma espectacular la producci&oacute;n del metabolito (PNF), s&iacute; evidenc&iacute;an el efecto de los xenobi&oacute;ticos disueltos en peque&ntilde;as cantidades en el agua del embalse sobre la actividad de la o-desmetilasa.</font></font><font size=-1></font>     <p><font face="Arial,Helvetica"><font size=-1>Estos resultados demuestran que la PIR, especificamente el sitio 1 (ya que la actividad de la AChA y OD se increment&oacute; y disminuy&oacute; respectivamente en este lugar), es un cuerpo de agua impactado por la contaminaci&oacute;n, por lo que es necesario establecer medidas de protecci&oacute;n para la fauna y flora del mismo, as&iacute; como para el usuario del recurso. En este trabajo tambi&eacute;n se demostr&oacute; la interacci&oacute;n de las propiedades fisicoqu&iacute;micas del agua y de los xenobi&oacute;ticos disueltos en ella con el efecto t&oacute;xico producido por los insecticidas, lo cual sugiere la necesidad de reconsiderar la existencia de un efecto sin&eacute;rgico o antag&oacute;nico entre ellos para establecer una metodolog&iacute;a apropiada para estimar el riesgo del empleo de estos plaguicidas.</font></font>     <br><font size=-1></font>&nbsp;<font size=-1></font>     <p><b><font face="Arial,Helvetica"><font size=-1>Resumen</font></font></b><font size=-1></font>     <p><font face="Arial,Helvetica"><font size=-1>Actualmente en M&eacute;xico son empleados los plaguicidas diclorodifeniltricloroetano (DDT) y clordano (CLO) para combatir la malaria y termitas. De 1990 a 1996 un total de 27 ton de DDT y 508 de CLO, en forma de productos t&eacute;cnicos, fueron importados. El objetivo de este estudio fue establecer una metodolog&iacute;a para determinar el impacto ambiental que pueden producir estos compuestos sobre un embalse. El efecto t&oacute;xico del DDT y CLO fue evaluado sobre la actividad de la o-demetilasa (OD) y del acetilcolinesterasa (AchA) del clad&oacute;cero <i>Daphnia magna </i>al exponerla a diferentes concentraciones de los insecticidas disueltos en el agua de tres sitios de la presa Ignacio Ram&iacute;rez (PIR). El efecto del agua contaminada con los insecticidas sobre la actividad de la AChA y OD, as&iacute; como la CL50, fueron utilizadas como indicadores de exposici&oacute;n para determinar los lugares m&aacute;s contaminadas de la PIR. Las caracter&iacute;sticas fisicoqu&iacute;micas del agua as&iacute; como la biodiversidad de los sitios en estudio de la presa fueron considerados. Los resultados obtenidos demuestran que la estaci&oacute;n cercana a la compuerta exhibe un potencial de toxicidad, ya que las actividades enzim&aacute;ticas fueron modificadas. Se sugiere utilizar las actividades de AchA y OD del clad&oacute;cero para evaluar la toxicidad de un cuerpo de agua contaminado por insecticidas organoclorados.</font></font>     <br><font size=-1></font>&nbsp;<font size=-1></font>     <p><b><font face="Arial,Helvetica"><font size=-1>Referencias</font></font></b><font size=-1></font>     <!-- ref --><p><a NAME="Anónimo"></a><font face="Arial,Helvetica"><font size=-1>An&oacute;nimo. 1997. Catalogo oficial de plaguicidas. Comisi&oacute;n Nacional Ecolog&iacute;a M&eacute;xico, D.F</font></font><font size=-1></font>    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1170479&pid=S0034-7744199900040000400001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><a NAME="Assem"></a><font face="Arial,Helvetica"><font size=-1>Assem, H., A. Khalifa &amp; H.R. Bodawi. 1989. Brain of the teost <i>Clarias iazera</i> as indicator of water contamination by phenol or methanol. Bull. Nat. Inst. Oceanogr. Fish Egypt. 15:119-128.</font></font><font size=-1></font>    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1170480&pid=S0034-7744199900040000400002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><a NAME="Atwood"></a><font face="Arial,Helvetica"><font size=-1>Atwood, H.L. 1982. Synapses and neurotransmitter, p. 45-59. <i>In</i> D.E., Bliss (ed.) The biology of crustacea, Neurobiology, Vol 3, Academic, Nueva York.</font></font><font size=-1></font>    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1170481&pid=S0034-7744199900040000400003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><a NAME="Bradford"></a><font face="Arial,Helvetica"><font size=-1>Bradford, M. 1976. A rapid and sensitive method for the quantitation of microgram quantities of protein utilizing the principles of dye-binding. Anal. Biochem. 72:248-254.</font></font><font size=-1></font>    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1170482&pid=S0034-7744199900040000400004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><a NAME="Braun"></a><font face="Arial,Helvetica"><font size=-1>Braun, G. &amp; B. Mulloney. 1994. Acetylcholinesterase activity in neurons of crayfish abdominal ganglia. J. Comp. Neurol. 350:272-280.</font></font><font size=-1></font>    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1170483&pid=S0034-7744199900040000400005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><a NAME="Buikema"></a><font face="Arial,Helvetica"><font size=-1>Buikema, A.L. Jr., B.R. Niederlehner &amp; J. Cairns Jr. 1982. Biological monitoring Part IV-toxicity testing. Water Res. 16:239-262.</font></font><font size=-1></font>    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1170484&pid=S0034-7744199900040000400006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><a NAME="De la Vega"></a><font face="Arial,Helvetica"><font size=-1>De la Vega S. M., L. Mart&iacute;nez-Tabche &amp; C.G. Mac&iacute;as . 1997. Bioaccumulation of methyl parathion and its toxicology in several species of freshwater community in Ignacio Ram&iacute;rez dam in M&eacute;xico. Ecotoxicol. Environ. Safety. 38:53-62.</font></font><font size=-1></font>    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1170485&pid=S0034-7744199900040000400007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><a NAME="Ecobichon"></a><font face="Arial,Helvetica"><font size=-1>Ecobichon, D.J. 1996. Toxic effect of pesticides. p. 649. <i>In </i>C.D. Klassen (ed.). Casarett &amp; Doull’s Toxicology. The basic science of poisons. 5th ed. McGraw-Hill. Nueva York.</font></font><font size=-1></font>    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1170486&pid=S0034-7744199900040000400008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><a NAME="Gill"></a><font face="Arial,Helvetica"><font size=-1>Gill, T.S., H. Tewari, J. Pande. 1991. <i>In vivo</i> and <i>in vitro</i> effects of cadmium on selected enzymes in different organs of the fish <i>Barbus conchonius ham</i> (rosy barb). Com. Biochem. Physiol. 100:501-505.</font></font><font size=-1></font>    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1170487&pid=S0034-7744199900040000400009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><a NAME="Gray"></a><font face="Arial,Helvetica"><font size=-1>Gray, J.S. 1989. Do bioassays adequately predic ecological effects of pollutants? P. 397-406. <i>In</i>. M. Munawar., G. Dixon, C.I. Mayfield, T. (ed.). Environmental Bioassay Techniques and their Application. Kluwer, Londres.</font></font><font size=-1></font>    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1170488&pid=S0034-7744199900040000400010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><a NAME="Harel"></a><font face="Arial,Helvetica"><font size=-1>Harel, M., L. Ischalk, F. Ehret-Sabatier, C. Bouet, M. Goeldner, C. Hirth, H. Axelsen, I. Silman, &amp; J.L. Sussman. 1993. Quaternary ligand to aromatic residues in the active-site gorge of acetylcholinesterase. Proc. Natl. Acad. Sci.90:9031-9035.</font></font><font size=-1></font>    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1170489&pid=S0034-7744199900040000400011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><a NAME="Hart63"></a><font face="Arial,Helvetica"><font size=-1>Hart, L.G, R.W. Shultice, &amp; J.R. Fouts. 1963. Stimulatory effects of chlordane on hepatic microsomal drug metabolism in the rat. Toxicol. Appl. Pharmacol. 5:371-386.</font></font><font size=-1></font>    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1170490&pid=S0034-7744199900040000400012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><a NAME="Hart65"></a><font face="Arial,Helvetica"><font size=-1>Hart, L.G. &amp; J.R. Fouts 1965. Studies of the possible mechanisms by which chlordane stimulates hepatic microsomal drug metabolism in the rat. Biochem. Pharmacol. 14:263-272.</font></font><font size=-1></font>    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1170491&pid=S0034-7744199900040000400013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><a NAME="Hestrin"></a><font face="Arial,Helvetica"><font size=-1>Hestrin, S. 1949. Reaction of acetylcholineand other carboxilic acid derivates with hidroxylamine and its analytical application. J. Biol. Chem. 180:249-261.</font></font><font size=-1></font>    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1170492&pid=S0034-7744199900040000400014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><a NAME="Hodgson"></a><font face="Arial,Helvetica"><font size=-1>Hodgson, E. 1994. Chemical and environmental factors affecting metabolism of xenobiotics. P. 153-175. In Hodgson E. &amp; E.P. Levi (eds) Introduction to biochemical toxicology. Appleton &amp; Lange. East Norwalk, Connecticut.</font></font><font size=-1></font>    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1170493&pid=S0034-7744199900040000400015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><a NAME="Hoffman"></a><font face="Arial,Helvetica"><font size=-1>Hoffman, D.J., M.B. Mamarderse, L.J. Lepcaptain &amp; G.W. Pendetlon. 1990. Effects of boron on growth and physiology in mallard dyckling. Environ. Toxicolo. Chem. 9:335-346.</font></font><font size=-1></font>    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1170494&pid=S0034-7744199900040000400016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><a NAME="Hoffman94"></a><font face="Arial,Helvetica"><font size=-1>Hoffman, E.R., S.W. Fisher. 1994. Comparison of a field and laboratory-derived population of <i>Chironomus riparius</i> (Diptera: Chironomidae): Biochemical and fitnedd evidence for population divergence. J. Econ. Entomol. 87:318-325.</font></font><font size=-1></font>    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1170495&pid=S0034-7744199900040000400017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><a NAME="Kufcsak"></a><font face="Arial,Helvetica"><font size=-1>Kufcsak, O., T. Szegletes, G. Lang, K. Halasy, Y. Benedeczky &amp; J. Nemcsok. 1994. Investigation of effects of pesticides on molecular forms of AChE in alimentary canals of carp. Pestic. Biochem. Physiol. 49:155-163.</font></font><font size=-1></font>    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1170496&pid=S0034-7744199900040000400018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><a NAME="Martínez91"></a><font face="Arial,Helvetica"><font size=-1>Mart&iacute;nez- Tabche, L., R. Alfaro, E. S&aacute;nchez-Hidalgo and C. I. Galar. 1991. Toxic effect of parathion on Moina macrocopa metabolisms. Bull. Environ. Contam. Toxicol. 47; 51-56.</font></font><font size=-1></font>    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1170497&pid=S0034-7744199900040000400019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><a NAME="Martínez92"></a><font face="Arial,Helvetica"><font size=-1>Mart&iacute;nez-Tabche L., E. B. Mart&iacute;nez and C. I. Galar. 1992. Parathion and Salinity effects on gills and mesonephros carbonic anhydrase activity of the fish <i>Oreochromis hornorum</i>. Bull. Environ. Contam. Toxicol. 49:929-934.</font></font><font size=-1></font>    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1170498&pid=S0034-7744199900040000400020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><a NAME="Martínez93"></a><font face="Arial,Helvetica"><font size=-1>Mart&iacute;nez-Tabche, L., I. Galar-Castelan, B. Ram&iacute;rez-Mora y A. Gonzalez Chavarria. 1993. Efecto t&oacute;xico del lindano sobre el metabolismo de la <i>Moina macrocopa</i>. Rev. Toxicol. 10:47-49.</font></font><font size=-1></font>    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1170499&pid=S0034-7744199900040000400021&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><a NAME="Martínez94a"></a><font face="Arial,Helvetica"><font size=-1>Mart&iacute;nez-Tabche, L., I. Galar, M.B. Ram&iacute;rez, R.A. Morales, F. C. German. 1994a. Parathion effect on acetylcholinesterase from fish through an artificial trophic chain: <i>Ankistrodesmus falcatus-Moina macrocopa-Oreochromis hornorum</i>. Bull. Environ Contam. Toxicol. 52:360-366.</font></font><font size=-1></font>    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1170500&pid=S0034-7744199900040000400022&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><a NAME="Martínez94b"></a><font face="Arial,Helvetica"><font size=-1>Mart&iacute;nez-Tabche, L., N.E. Morales, M. Ram&iacute;rez, C.I.Galar &amp; G.H. Cardona. 1994b. Effect of lead on the reaction of o-demethylase in p-nitro anisole in the cladoceran <i>Moina macrocopa.</i> J. Aquat. Ecosys. Health. 3:255-258.</font></font><font size=-1></font>    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1170501&pid=S0034-7744199900040000400023&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><a NAME="Martínez95"></a><font face="Arial,Helvetica"><font size=-1>Mart&iacute;nez-Tabche, L. C. Germ&aacute;n-Faz, B. Ram&iacute;rez-Mora, &amp; I. Galar. 1995. Efecto t&oacute;xico del Carbaryl en <i>Moina macrocopa </i>y<i> Oncorhynchusmykiss</i>. Rev. Toxicol. 12:119-123.</font></font><font size=-1></font>    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1170502&pid=S0034-7744199900040000400024&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><a NAME="Martínez97"></a><font face="Arial,Helvetica"><font size=-1>Mart&iacute;nez-Tabche L., M. Ram&iacute;rez, F. German, C. Galar, M. Madrigal, Ulloa G.V., &amp; F.Orozco. 1997. Toxic effect of sodium dodecylbencensulfonate, lead, petroluem, and their mixtures on the activity of acetylcholinesterase of <i>Moina macrocopa </i>in vitro. Environ. Toxicol. Water. Qual. 12:211-215.</font></font><font size=-1></font>    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1170503&pid=S0034-7744199900040000400025&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><a NAME="McMahon"></a><font face="Arial,Helvetica"><font size=-1>McMahon, R.E., H. W. Culp, J. Millis &amp; F.J. Marshall. 1963. Microsomal p-nitroanisole o-demethylase. J. Med. Chem. 6:343-349.</font></font><font size=-1></font>    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1170504&pid=S0034-7744199900040000400026&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><a NAME="Metelev"></a><font face="Arial,Helvetica"><font size=-1>Metelev, V.V., A.L. Kanaev, N.G. Dzasokhova. 1983. Water toxicology. p 63. Amerind Publishing. Nueva Delhi.</font></font><font size=-1></font>    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1170505&pid=S0034-7744199900040000400027&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p><a NAME="Murphy"></a><font face="Arial,Helvetica"><font size=-1>Murphy, P.G. 1970. 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