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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Actividad gastrointestinal del extracto acuoso bruto de Quassia amara (Simarubaceae)]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="es"><p><![CDATA[En este estudio se ha investigado el efecto del extracto acuoso bruto de Q. amara a nivel gastrointestinal utilizando varios modelos experimentales en animales. Los resultados muestran que este extracto a dosis de 500 y 1000 mg/kg produce un aumento del tránsito gastrointestinal y que es capaz de inhibir las lesiones inducidas por la indometacina, el alcohol y el estrés. Los animales tratados con dosis de 1000 mg/kg mostraron disminución de la acidez de los contenidos estomacales y de la actividad péptica y un incremento en la cantidad del moco protector de la mucosa.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[ <CENTER><B><FONT FACE="Arial,Helvetica">Actividad gastrointestinal del extracto acuoso bruto de<I>Quassia amara</I> (Simarubaceae)</FONT></B></CENTER>      <CENTER>&nbsp;</CENTER>      <CENTER>&nbsp;</CENTER>      <CENTER><FONT FACE="Arial,Helvetica"><FONT SIZE=-1><B>Beatriz Badilla&nbsp;<A NAME="1"></A></B><SUP><A HREF="#1ab">1</A></SUP><B>&nbsp; Tatiana Miranda&nbsp;<A NAME="1a"></A></B><SUP><A HREF="#1ab">1</A></SUP><B>&nbsp; Gerardo Mora&nbsp;<A NAME="2"></A></B><SUP><A HREF="#2a">2</A></SUP><B>&nbsp;&nbsp; Kattia Vargas&nbsp;<A NAME="1b"></A></B><SUP><A HREF="#1ab">1</A></SUP></FONT></FONT></CENTER>      <CENTER>&nbsp;</CENTER>      <CENTER>&nbsp;</CENTER>      <CENTER><FONT FACE="Arial,Helvetica"><FONT SIZE=-1>Recibido 10-IV-1997. Corregido 27-X-1997. Aceptado 14-I-1998</FONT></FONT></CENTER>       <P><B><FONT FACE="Arial,Helvetica"><FONT SIZE=-1>Abstract</FONT></FONT></B>      <P><FONT FACE="Arial,Helvetica"><FONT SIZE=-1>The gastrointestinal activity of an aqueous extract of the dry wood of Quassia amara was investigated using animal models. Oral administration of the extract to mice produces an increase of gastrointestinal transit at doses of 500 and 1000 mg/kg. The antiulcerogenic activity was measured inducing ulcers on Sprague-Dowly rats with indomethacin or ethanol and by the induction of stress. The experimental group was treated orally with the extract, using doses of 250, 500 and 1000 mg/kg before inducing the ulcers. Animals treated orally with 0.5 ml of water and ranitidine (50 mg/kg) were used as controls. All the animals treated with the extract at doses of 500 and 1000 mg/kg showed important protection against ulcer generation. Piloric ligation was used to stablish the activity on total acidity, peptic activity, non-protein sulfhydryl groups, and mucus production. Animals treated with 1000 mg/kg showed a reduction on acidity and peptic activity. No activity was detected on mucus production and non-protein sulfhydryl groups at these dosis but with 1500 mg/kg they showed an increase non-protein sulfhydryl groups producction.</FONT></FONT>     <BR>&nbsp;      ]]></body>
<body><![CDATA[<P><B><FONT FACE="Arial,Helvetica"><FONT SIZE=-1>Key words</FONT></FONT></B>      <P><FONT FACE="Arial,Helvetica"><FONT SIZE=-1>Quassia amara, Phytopharmacology, medicinal plants, gastrointestinal activity, anti-ulcerogenic activity.</FONT></FONT>     <BR>&nbsp;      <P><FONT FACE="Arial,Helvetica"><FONT SIZE=-1>La Quassia amara es una planta conocida por los principios amargos de la corteza del tallo usados por su propiedad t&oacute;nica por los ind&iacute;genas de Sur Am&eacute;rica <A HREF="#Morton">(Morton 1981)</A> y de Costa Rica <A HREF="#Nuñez">(Nu&ntilde;ez 1986)</A> contra calenturas pal&uacute;dicas y para el dolor de est&oacute;mago acompa&ntilde;ado de c&oacute;lico. Frecuentemente se usa en maceraci&oacute;n en agua fr&iacute;a o en infusi&oacute;n como t&oacute;nico amargo estimulante del apetito <A HREF="#Ocampo">(Ocampo 1994)</A>. Pittier refiere que en Costa Rica es uno de los principales remedios ind&iacute;genas. Estos dividen el tronco en trozos de 30-60 cm, uno de los que siempre llevan en sus viajes <A HREF="#Pittier">(Pittier 1957)</A>. Esta planta deriva su nombre de un habitante de Surinam llamado Quassi que a mediados del siglo XVIII adquiri&oacute; fama tratando fiebres malignas. En 1756 se investigaron muestras de esta planta en Estocolmo y en 1764 apareci&oacute; la primera referencia de Blom como Lignum quassie, convirti&eacute;ndose en una medicina febr&iacute;fuga, antidisent&eacute;rica y t&oacute;nica muy popular <A HREF="#Cáceres">(C&aacute;ceres 1996)</A>.</FONT></FONT>      <P><FONT FACE="Arial,Helvetica"><FONT SIZE=-1>En Costa Rica, de acuerdo con los datos suministrados por las compa&ntilde;&iacute;as productoras nacionales, se consumen 675 kg de la madera de esta planta, en forma de extracto de Quassia amara, llamado tambi&eacute;n "gotas amargas", para el tratamiento de problemas gastrointestinales inespec&iacute;ficos. El uso de esta planta ha motivado la presente investigaci&oacute;n en la que se estudia la actividad antiulcerosa, la actividad antisecretora &aacute;cida, la gastroprotectora y la actividad sobre el tr&aacute;nsito intestinal del extracto acuoso de Quassia amara.</FONT></FONT>     <BR>&nbsp;      <P><B><FONT FACE="Arial,Helvetica"><FONT SIZE=-1>Materiales y M&eacute;todos</FONT></FONT></B>      <P><FONT FACE="Arial,Helvetica"><FONT SIZE=-1><B>Preparaci&oacute;n del extracto de Quassia amara:</B> La corteza de Q. amara fue recolectada por el personal del Centro Agron&oacute;mico Tropical de Investigaci&oacute;n y Ense&ntilde;anza (CATIE), en Puerto Viejo, Provincia de Lim&oacute;n, en octubre de 1995. La planta se identific&oacute; por comparaci&oacute;n con la muestra No.USJ 49307 del Herbario de la Universidad de Costa Rica.</FONT></FONT>      <P><FONT FACE="Arial,Helvetica"><FONT SIZE=-1>El material recolectado fue picado, secado, y molido en un molino Wiley hasta obtener un polvo homog&eacute;neo. Con este material se hizo una extracci&oacute;n acuosa al 10 %, calentando durante 30 minutos a 72&deg;C El filtrado fue evaporado en un rotavapor cuidando que la temperatura no pasara de un m&aacute;ximo de 40&deg;C, hasta llevarlo a un volumen de 100 ml. El material resultante fue liofilizado obteni&eacute;ndose un rendimiento de 11.5 g de liofilizado por cada 500 g de corteza. El liofilizado fue mantenido en refrigeraci&oacute;n en un envase sellado y protegido de la luz.</FONT></FONT>      <P><FONT FACE="Arial,Helvetica"><FONT SIZE=-1><B>Animales:</B> Se usaron ratones Mus musculus adultos, machos y hembras, con un peso entre 25 a 35 g y ratas Rattus norvegicus, variedad Sprague-Dowly, machos, con un peso entre 250 y 300 g, nacidos en la Unidad de Bioterios de la Universidad de Costa Rica. Todos los animales fueron mantenidos en condiciones controladas de luz y temperatura, con comida y acceso libre al agua. Antes de la administraci&oacute;n de los tratamientos, los animales permanecieron en ayuno por un per&iacute;odo no mayor de 12 horas, a excepci&oacute;n de los animales usados en la prueba de ligadura de p&iacute;loro, que permanecieron en ayuno por 24 horas.</FONT></FONT>      ]]></body>
<body><![CDATA[<P><B><FONT FACE="Arial,Helvetica"><FONT SIZE=-1>Pruebas biol&oacute;gicas</FONT></FONT></B>      <P><FONT FACE="Arial,Helvetica"><FONT SIZE=-1><B>Actividad sobre el tr&aacute;nsito intestinal:</B> Se pesaron y marcaron cinco grupos de seis ratones que, despu&eacute;s de seis horas de ayuno, fueron tratados de la siguiente manera : un grupo con neostigmina 1&nbsp;<IMG SRC="/img/fbpe/rbt/v46n2/simbi14.GIF" HEIGHT=23 WIDTH=20>g/kg v&iacute;a subcut&aacute;nea (s.c.), otro grupo con atropina 1 mg/kg v&iacute;a intramuscular (i.m.) y a los tres grupos restantes se les administr&oacute; el extracto acuoso bruto de Q. amara v&iacute;a oral (v.o.) en dosis de 250, 500 y 1000 mg/kg, respectivamente. Transcurridos treinta minutos del tratamiento, se procedi&oacute; a administrar carb&oacute;n activado al 10% en agua, a una dosis de 0.1 ml/10 g de peso v.o. Pasados treinta minutos de la administraci&oacute;n del carb&oacute;n, los animales fueron sacrificados con anestesia et&eacute;rea profunda. Se extrajo el est&oacute;mago y el intestino y se midi&oacute; la distancia recorrida por el carb&oacute;n desde el p&iacute;loro hasta la &uacute;ltima porci&oacute;n del intestino que contuvo por lo menos 1 cm cont&iacute;nuo de carb&oacute;n. La distancia se expresa como la media del porcentaje de la longitud total del intestino recorrida por el carb&oacute;n&nbsp;<IMG SRC="/img/fbpe/rbt/v46n2/simbi15.GIF" HEIGHT=15 WIDTH=16>error estandar de seis animales <A HREF="#Arbos">(Arbos et al. 1993)</A>.</FONT></FONT>      
<P><FONT FACE="Arial,Helvetica"><FONT SIZE=-1><B>Determinaci&oacute;n de la actividad anti&uacute;lcera</B>. <B>Inducci&oacute;n de lesiones g&aacute;stricas: </B>Se utilizaron 5 grupos de 6 ratas cada uno por cada modelo de inducci&oacute;n de &uacute;lceras. Cada modelo tuvo su propio grupo control (agua) y su control positivo (ranitidina). Las lesiones g&aacute;stricas fueron inducidas por la aplicaci&oacute;n de indometacina a dosis de 10 mg/kg v&iacute;a s.c. <A HREF="#Aguwa">(Aguwa y Mittal 1981)</A>, por la administraci&oacute;n de 0.5 ml v.o. de etanol al 75 % <A HREF="#Aguwa">(Aguwa y Mittal 1981)</A> y, en el grupo de estudio de &uacute;lceras inducidas por estr&eacute;s, los animales fueron anestesiados ligeramente con &eacute;ter e introducidos en un tubo de restricci&oacute;n de movimiento (18cm de largo x 6cm de di&aacute;metro) fabricado de cloruro de polivinilo y se mantuvieron por dos horas a una temperatura de 4&deg;C <A HREF="#Glavin">(Glavin y Szabo 1992)</A>. Las ratas fueron mantenidas en ayuno por doce horas con acceso libre al agua antes de la inducci&oacute;n de las &uacute;lceras. Sesenta minutos antes de la aplicaci&oacute;n del agente inductor de &uacute;lceras, el grupo control fue tratado con 0.5 ml de agua v.o., el grupo control positivo con 50 mg/kg v.o. de ranitidina y los tres grupos restantes fueron tratados v.o. con el extracto acuoso bruto de Q. amara a dosis de 250, 500 y 1000 mg/kg. Seis horas despu&eacute;s de inducir las lesiones g&aacute;stricas, se sacrificaron los animales con anestesia et&eacute;rea profunda y se removieron los est&oacute;magos a los que se les practic&oacute; una incisi&oacute;n en la curvatura menor, se expuso la mucosa y se determin&oacute; la severidad de las lesiones (&iacute;ndice de lesi&oacute;n) de acuerdo con los criterios previamente establecidos <A HREF="#Fischman">(Fischman et al. 1991</A>,<A HREF="#Gamberini">Gamberini et al. 1991)</A>.</FONT></FONT>      <P><FONT FACE="Arial,Helvetica"><FONT SIZE=-1><B>M&eacute;todo de la ligadura de p&iacute;loro:</B> Seis grupos de seis animales se mantuvieron en ayuno de 24 horas con libre acceso a agua con glucosa al 5%. A los animales. previamente anestesiados con &eacute;ter, se les realiz&oacute; una incisi&oacute;n de cerca de 2 cm en la pared abdominal a trav&eacute;s de la que se localiz&oacute; el est&oacute;mago y se lig&oacute; el p&iacute;loro. A los animales del grupo control se les administr&oacute; 0.5 ml de agua por cada 100 g de peso por v&iacute;a intraduodenal (i.d.), el grupo control positivo fue tratado con ranitidina (50 mg/kg i.d.) y el resto de los animales fueron tratados con el extracto acuoso de Quassia amara a dosis de 250, 500, 1000 y 1500 mg/kg i.d.. Los animales fueron suturados y transcurridas cuatro horas despu&eacute;s de la cirug&iacute;a, se sacrificaron con anestesia et&eacute;rea profunda y se removieron los est&oacute;magos pinzando el es&oacute;fago para evitar la p&eacute;rdida del material secretado. El est&oacute;mago fue mantenido sobre una placa de hielo, se abri&oacute; a lo largo de la curvatura menor y se lav&oacute; la mucosa con 3 ml de agua destilada. El jugo g&aacute;strico recogido y los lavados fueron centrifugados (1500 rpm/30 min) y se retiraron 200 m<IMG SRC="/img/fbpe/rbt/v46n2/simbi14.GIF" HEIGHT=23 WIDTH=20>l de sobrenadante para la determinaci&oacute;n de la actividad p&eacute;ptica. El resto del jugo g&aacute;strico se reserv&oacute; para determinar la acidez <A HREF="#Lapa">(Lapa 1994)</A>.</FONT></FONT>      
<P><FONT FACE="Arial,Helvetica"><FONT SIZE=-1>Al tejido muscular estomacal se le descart&oacute; la regi&oacute;n del cardias y del antro pil&oacute;rico. La parte del cuerpo glandular fue dividida en dos segmentos aproximadamente iguales. Uno de los segmentos fue colocado en trypan blue para la determinaci&oacute;n del moco adherido a la barrera g&aacute;strica. El otro segmento se incub&oacute; en soluci&oacute;n de EDTA 0.02 M para la determinaci&oacute;n de grupos sulfhidrilo no prote&iacute;cos <A HREF="#Lapa">(Lapa 1994)</A>.</FONT></FONT>      <P><FONT FACE="Arial,Helvetica"><FONT SIZE=-1>La acidez total fue determinada por titulaci&oacute;n con NaOH 0.1 N utilizando fenoftale&iacute;na como indicador, y la acidez libre fue determinada con un potenci&oacute;metro. El resultado de la acidez se expresa como la media de la concentraci&oacute;n en meq/ml&nbsp;<IMG SRC="/img/fbpe/rbt/v46n2/simbi15.GIF" HEIGHT=15 WIDTH=16>error estandar. La actividad p&eacute;ptica en el jugo g&aacute;strico fue determinada por el m&eacute;todo modificado de Anson <A HREF="#Anson">(Anson 1938)</A> y la determinaci&oacute;n de los grupos sulfhidrilo no proteicos se realiz&oacute; mediante el m&eacute;todo de <A HREF="#Sedlak">Sedlak y Lindsay (1988)</A>.</FONT></FONT>      
<P><FONT FACE="Arial,Helvetica"><FONT SIZE=-1><B>Tratamiento estad&iacute;stico:</B> Las diferencias estad&iacute;sticas entre los grupos experimentales y controles fueron determinadas por medio de la prueba de Kruskcal-Wallis, consider&aacute;ndose como significativos los valores de p &lt; 0.05.</FONT></FONT>     <BR>&nbsp;      <P><B><FONT FACE="Arial,Helvetica"><FONT SIZE=-1>Resultados</FONT></FONT></B>      <P><FONT FACE="Arial,Helvetica"><FONT SIZE=-1><B>Actividad sobre el tr&aacute;nsito intestinal:</B> Los animales tratados con atropina i.m. (1 mg/kg) presentaron un porcentaje de recorrido de carb&oacute;n de 37.67&nbsp;<IMG SRC="/img/fbpe/rbt/v46n2/simbi15.GIF" HEIGHT=15 WIDTH=16> 4.90. Los tratados con neostigmina s.c (1 mg/kg) presentaron un valor de 48.33&nbsp;<IMG SRC="/img/fbpe/rbt/v46n2/simbi15.GIF" HEIGHT=15 WIDTH=16>.39 mostrando una diferencia estad&iacute;sticamente significativa (p&lt; 0.05) con respecto al control, cuyo recorrido fue de 39.33&nbsp;<IMG SRC="/img/fbpe/rbt/v46n2/simbi15.GIF" HEIGHT=15 WIDTH=16>1.73. Los animales tratados con Quassia amara a dosis de 250, 500 y 1000 mg/kg mostraron un recorrido de 59.33 &amp;plusmn;<IMG SRC="/img/fbpe/rbt/v46n2/simbi15.GIF" HEIGHT=15 WIDTH=16> 4.60, 59.67&nbsp;<IMG SRC="/img/fbpe/rbt/v46n2/simbi15.GIF" HEIGHT=15 WIDTH=16>3.84 y 76.83&nbsp;<IMG SRC="/img/fbpe/rbt/v46n2/simbi15.GIF" HEIGHT=15 WIDTH=16> 4.25 respectivamente. Estos dos &uacute;ltimos valores fueron estad&iacute;sticamente significativos con respecto al control (p&lt; 0.05), <A HREF="#fig1">(Fig. 1)</A></FONT></FONT>     
]]></body>
<body><![CDATA[<BR>&nbsp;     <BR>&nbsp; <TABLE BORDER=0 CELLSPACING=0 WIDTH="624" > <TR> <TD VALIGN=CENTER WIDTH="50%"><A NAME="fig1"></A><IMG SRC="/img/fbpe/rbt/v46n2/0081i01.GIF" HEIGHT=424 WIDTH=286></TD>  <TD VALIGN=CENTER WIDTH="50%"><A NAME="fig2"></A><IMG SRC="/img/fbpe/rbt/v46n2/0081i02.GIF" HEIGHT=408 WIDTH=286></TD> </TR> </TABLE> <B><FONT FACE="Arial,Helvetica"><FONT SIZE=-1>&nbsp;</FONT></FONT></B>     
<BR><B><FONT FACE="Arial,Helvetica"><FONT SIZE=-1>&nbsp;</FONT></FONT></B>     <BR><B><FONT FACE="Arial,Helvetica"><FONT SIZE=-1>Determinaci&oacute;n de la actividad antiulcerosa</FONT></FONT></B>      <P><FONT FACE="Arial,Helvetica"><FONT SIZE=-1><B>Lesiones g&aacute;stricas inducidas por indometacina: </B>Los animales del grupo control presentanron un &iacute;ndice de lesi&oacute;n de 5.83&nbsp;<IMG SRC="/img/fbpe/rbt/v46n2/simbi15.GIF" HEIGHT=15 WIDTH=16>0.83 y los tratados con ranitidina (50 mg/kg, v.o.) presentaron un valor de 4.50&nbsp;<IMG SRC="/img/fbpe/rbt/v46n2/simbi15.GIF" HEIGHT=15 WIDTH=16> 0.34. Los animales tratados con con el extracto de Q. amara v.o. a dosis de 250 mg/kg presentaron un &iacute;ndice de lesi&oacute;n de 4.55&nbsp;<IMG SRC="/img/fbpe/rbt/v46n2/simbi15.GIF" HEIGHT=15 WIDTH=16> 0.23 , de 3.00&nbsp;<IMG SRC="/img/fbpe/rbt/v46n2/simbi15.GIF" HEIGHT=15 WIDTH=16> 0.26 a la dosis de 500 mg/kg y de 3.17&nbsp;<IMG SRC="/img/fbpe/rbt/v46n2/simbi15.GIF" HEIGHT=15 WIDTH=16>0.48 con la dosis de 1000 mg/kg, mostrando estos dos &uacute;ltimos grupos una diferencia estad&iacute;sticamente significativa con respecto al control (p&lt; 0.05), <A HREF="#fig2">(Fig. 2)</A>.</FONT></FONT>      
<P><FONT FACE="Arial,Helvetica"><FONT SIZE=-1><B>Lesiones g&aacute;stricas inducidas por estr&eacute;s:</B> Los animales del grupo control presentaron un &iacute;ndice de lesi&oacute;n de 4.55<IMG SRC="/img/fbpe/rbt/v46n2/simbi15.GIF" HEIGHT=15 WIDTH=16> 0.44, los tratados con ranitidina (50 mg/kg, v.o.) presentaron un valor de 3.90&nbsp;<IMG SRC="/img/fbpe/rbt/v46n2/simbi15.GIF" HEIGHT=15 WIDTH=16>0.09 los tratados con el extracto de Q. amara mostraron un &iacute;ndice de lesi&oacute;n de 4.17&nbsp;<IMG SRC="/img/fbpe/rbt/v46n2/simbi15.GIF" HEIGHT=15 WIDTH=16> 0.17 para la dosis de 250 mg/kg v.o.,de 3.33&nbsp;<IMG SRC="/img/fbpe/rbt/v46n2/simbi15.GIF" HEIGHT=15 WIDTH=16>0.23 para la dosis de de 500 mg/kg v.o. y de 3.33<IMG SRC="/img/fbpe/rbt/v46n2/simbi15.GIF" HEIGHT=15 WIDTH=16>0.18 para la dosis de 1000 mg/kg.. Estos dos &uacute;ltimos datos presentan diferencia estad&iacute;sticamente significativa con respecto al control (p&lt; 0.05), <A HREF="#fig3">(Fig. 3)</A>.</FONT></FONT>      
<P><FONT FACE="Arial,Helvetica"><FONT SIZE=-1><B>Lesiones g&aacute;stricas inducidas por etanol:</B> Los animales del grupo control presentaron un &iacute;ndice de lesi&oacute;n de 5.50&nbsp;<IMG SRC="/img/fbpe/rbt/v46n2/simbi15.GIF" HEIGHT=15 WIDTH=16> 0.96. Los tratados con ranitidina (50 mg/kg v.o.) presentaron un &iacute;ndice de 2.83&nbsp;<IMG SRC="/img/fbpe/rbt/v46n2/simbi15.GIF" HEIGHT=15 WIDTH=16>0.17. Los animales tratados con el extracto de Q. amara mostraron un valor de 4.67&nbsp;<IMG SRC="/img/fbpe/rbt/v46n2/simbi15.GIF" HEIGHT=15 WIDTH=16>0.21 cuando fueron tratados con 250 mg/kg v.o. Cuando se us&oacute; la dosis de 500 mg/kg v.o. presentaron un valor de 2.67<IMG SRC="/img/fbpe/rbt/v46n2/simbi15.GIF" HEIGHT=15 WIDTH=16> 0.21 y de 2.17<IMG SRC="/img/fbpe/rbt/v46n2/simbi15.GIF" HEIGHT=15 WIDTH=16>0.17 en la dosis de 100 mg/kg v.o. Estos dos &uacute;ltimos datos presentaron diferencia estad&iacute;sticamente significativa con respecto al control (p&lt; 0.05),<A HREF="#fig4">(Fig. 4)</A>.</FONT></FONT>     
<BR>&nbsp;      <P><A NAME="fig3"></A><IMG SRC="/img/fbpe/rbt/v46n2/0081i03.GIF" HEIGHT=404 WIDTH=278><A NAME="fig4"></A><IMG SRC="/img/fbpe/rbt/v46n2/0081i04.GIF" HEIGHT=416 WIDTH=279>     
<BR>&nbsp;      ]]></body>
<body><![CDATA[<P><FONT FACE="Arial,Helvetica"><FONT SIZE=-1><B>M&eacute;todo de ligadura de p&iacute;loro:</B> Los grupos tratados con Q. amara a dosis de 250 y 500 mg/kg no mostraron ning&uacute;n efecto sobre el modelo de ligadura de p&iacute;loro, raz&oacute;n por la que se aument&oacute; la dosis y se usaron dos grupos experimentales con dosis de 1000 y de 1500 mg/kg.</FONT></FONT>      <P><FONT FACE="Arial,Helvetica"><FONT SIZE=-1><B>Determinaci&oacute;n de la acidez total:</B> El jugo g&aacute;strico de los animales del grupo control present&oacute; una acidez total de 46.00&nbsp;<IMG SRC="/img/fbpe/rbt/v46n2/simbi15.GIF" HEIGHT=15 WIDTH=16>8.75 meq/l y los tratados con ranitidina (50 mg/kg v.o.) una acidez de 7.27&nbsp;<IMG SRC="/img/fbpe/rbt/v46n2/simbi15.GIF" HEIGHT=15 WIDTH=16> 0.96 meq/l. El jugo g&aacute;strico de los animales tratados con Q. amara a dosis de 1000 mg/kg v.o. present&oacute; una acidez de 8.43&nbsp;<IMG SRC="/img/fbpe/rbt/v46n2/simbi15.GIF" HEIGHT=15 WIDTH=16>0.84, siendo este dato estad&iacute;sticamente diferente del control (p&lt; 0.05). Los est&oacute;magos de los animales tratados con 1500 mg/kg produjeron un volumen muy peque&ntilde;o de l&iacute;quido lo que impidi&oacute; la determinaci&oacute;n de la acidez total.</FONT></FONT>      
<P><FONT FACE="Arial,Helvetica"><FONT SIZE=-1>El jugo g&aacute;strico de los animales del grupo control present&oacute; un pH con un valor de 1.36&nbsp;<IMG SRC="/img/fbpe/rbt/v46n2/simbi15.GIF" HEIGHT=15 WIDTH=16>0.08. Los animales tratados con ranitidina (50 mg/kg v.o.) presentaron un valor de 5.70&nbsp;<IMG SRC="/img/fbpe/rbt/v46n2/simbi15.GIF" HEIGHT=15 WIDTH=16>0.54. Los tratados con el extracto de Q. amara (1000 mg/kg) presentaron un valor de 2.78&nbsp;<IMG SRC="/img/fbpe/rbt/v46n2/simbi15.GIF" HEIGHT=15 WIDTH=16>0.07 sin ser estad&iacute;sticamente significativa al compararla con el control.</FONT></FONT>      
<P><FONT FACE="Arial,Helvetica"><FONT SIZE=-1><B>Determinaci&oacute;n de la actividad p&eacute;ptica en el jugo g&aacute;strico:</B> El jugo g&aacute;strico de los animales del grupo control present&oacute; una actividad p&eacute;ptica de 66.07&nbsp;<IMG SRC="/img/fbpe/rbt/v46n2/simbi15.GIF" HEIGHT=15 WIDTH=16> 2.04 mg/ml/4 horas. Los animales tratados con ranitidina (50 mg/kg v.o.) presentaron un valor de 56.67&nbsp;<IMG SRC="/img/fbpe/rbt/v46n2/simbi15.GIF" HEIGHT=15 WIDTH=16>10.01 mg/ml/4 horas. Los animales tratados con el extracto de Q. amara (1000 mg/kg) presentaron un valor de 53.09&nbsp;<IMG SRC="/img/fbpe/rbt/v46n2/simbi15.GIF" HEIGHT=15 WIDTH=16>6.47 m /ml/4 horas que muestra una diferencia estad&iacute;sticamente significativa con respecto al control (p &lt; 0.05).</FONT></FONT>      
<P><FONT FACE="Arial,Helvetica"><FONT SIZE=-1><B>Determinaci&oacute;n de los grupos sulfhidrilo no-proteicos de la mucosa g&aacute;strica:</B> Los est&oacute;magos de los animales del grupo control presentaron 3.74&nbsp;<IMG SRC="/img/fbpe/rbt/v46n2/simbi15.GIF" HEIGHT=15 WIDTH=16>0.20 mg de GSH/ml/g de tejido. Los animales tratados con ranitidina (50 mg/kg v.o.) presentaron un valor de 38.54<IMG SRC="/img/fbpe/rbt/v46n2/simbi15.GIF" HEIGHT=15 WIDTH=16>2.04 mg de GSH/ml/g de tejido. Los animales tratados con Q. amara presentaron un valor de 3.89&nbsp;<IMG SRC="/img/fbpe/rbt/v46n2/simbi15.GIF" HEIGHT=15 WIDTH=16>0.09 mg de GSH/ ml/g de tejido a una dosis de 1000 mg/kg y de 114.94&nbsp;<IMG SRC="/img/fbpe/rbt/v46n2/simbi15.GIF" HEIGHT=15 WIDTH=16>1.63 mg de GSH/ ml/g de tejido a una dosis de 1500 mg/kg. Los animales tratados con 1500 mg/kg produjeron resultados estad&iacute;sticamente significativos con respecto al control (p&lt;0.05),<A HREF="#fig5">(Fig. 5)</A>.</FONT></FONT>      
<P><FONT FACE="Arial,Helvetica"><FONT SIZE=-1><B>Determinaci&oacute;n de moco en la barrera gastroprotectora:</B> Los est&oacute;magos de los animales del grupo control presentaron un valor, en la cantidad de moco, de 31.42&nbsp;<IMG SRC="/img/fbpe/rbt/v46n2/simbi15.GIF" HEIGHT=15 WIDTH=16>2.21 m g de alcial blue/ ml/g de tejido. Los animales tratados con ranitidina (50 mg/kg v.o.) presentaron un valor de 45.12&nbsp;<IMG SRC="/img/fbpe/rbt/v46n2/simbi15.GIF" HEIGHT=15 WIDTH=16>1.29 mg alcial blue/ml/g de tejido. Los animales tratados con el extracto de Q. amara presentaron un valor de 30.08<IMG SRC="/img/fbpe/rbt/v46n2/simbi15.GIF" HEIGHT=15 WIDTH=16>.24 mg de alcial blue/ml/g de tejido a una dosis de 100 mg/kg y 30.51&nbsp;<IMG SRC="/img/fbpe/rbt/v46n2/simbi15.GIF" HEIGHT=15 WIDTH=16>2.38 a una dosis de 1500 mg/kg. Ni la dosis de 1000 mg/kg ni la de 1500 mg/kg presentaron diferencias estad&iacute;sticamente significativa con respecto al control.</FONT></FONT>     
<BR>&nbsp;     <CENTER><A NAME="fig5"></A><IMG SRC="/img/fbpe/rbt/v46n2/0081i05.GIF" HEIGHT=408 WIDTH=302></CENTER>       
<P>&nbsp;     <BR>&nbsp;     ]]></body>
<body><![CDATA[<BR>&nbsp;      <P><B><FONT FACE="Arial,Helvetica"><FONT SIZE=-1>Discusi&oacute;n</FONT></FONT></B>      <P><FONT FACE="Arial,Helvetica"><FONT SIZE=-1>Los resultados obtenidos en los animales tratados con 500 y 1000 mg/kg v.o. muestran que el extracto acuoso de Q. amara produce un aumento del tr&aacute;nsito intestinal dependiente de la dosis, probablemente mediado por una acci&oacute;n muscar&iacute;nica directa a nivel de los receptores M1 y M2 o por una acci&oacute;n anticolinester&aacute;sica. Este hallazgo, difiere un poco de lo reportado en la literatura <A HREF="#Garcia">(Garc&iacute;a et al. 1997)</A>, en donde no se encuentra aumento del tr&aacute;nsito intestinal con la dosis de 500 mg.</FONT></FONT>      <P><FONT FACE="Arial,Helvetica"><FONT SIZE=-1>El extracto de Q. amara presenta una importante actividad protectora de las lesiones g&aacute;stricas inducidas por indometacina, etanol y estr&eacute;s, que son modelos representativos de la enfermedad ulcerosa g&aacute;strica en el humano <A HREF="#Silen,W">(</A><A HREF="#Silen_W">Silen 1988)</A>. En el caso del modelo de inducci&oacute;n de &uacute;lceras por indometacina, los resultados sugieren una estimulaci&oacute;n de la producci&oacute;n de prostaglandinas end&oacute;genas <A HREF="#Wallace">(Wallace 1992)</A>, concordante con el efecto protector que muestran las prostaglandinas contra los efectos ulcerog&eacute;nicos causados por los analg&eacute;sicos antiinflamatorios no esteroideos <A HREF="#Brunton">(Brunton 1996)</A>; esto &uacute;ltimo es compatible con el efecto producido en el modelo de estr&eacute;s en el que se muestra una protecci&oacute;n que tambi&eacute;n podr&iacute;a ser mediada por un aumento del flujo sangu&iacute;neo de la mucosa, que evita la hipoxia tisular producida por el estr&eacute;s<A HREF="#Ko,"> (Ko et al. 1991</A>,<A HREF="#Mosnier,">Mosnier et al. 1993)</A>. Los efectos que se presentaron en el modelo de etanol, apoyan a&uacute;n mas el posible mecanismo de citoprotecci&oacute;n mediado por prostaglandinas <A HREF="#Miller">(Miller 1983</A>, <A HREF="#Robert">Robert 1979)</A>.</FONT></FONT>      <P><FONT FACE="Arial,Helvetica"><FONT SIZE=-1>Salvo por la producci&oacute;n de mucus, la disminuci&oacute;n de la actividad p&eacute;ptica y el efecto sobre la acidez total, parecen indicar que el extracto podr&iacute;a tener un efecto similar al que se encuentra con las prostaglandinas tal como se ha reportado con los an&aacute;logos de las prostaglandinas de la serie E 1 <A HREF="#Brunton">(Brunton 1996)</A>. La protecci&oacute;n brindada por este extracto se encuentra mediada por la producci&oacute;n de grupos sulfhidrilo no proteicos, solamente en dosis altas.</FONT></FONT>      <P><FONT FACE="Arial,Helvetica"><FONT SIZE=-1>El extracto de Quassia amara se comporta como un agente que, de forma dependiente de la dosis, proteje la mucosa g&aacute;strica contra est&iacute;mulos inductores de lesiones, adem&aacute;s de producir un su efecto procin&eacute;tico intestinal Estos resultados no pueden ser atribu&iacute;dos a ninguna de las sustancias presentes en el extracto hasta no llevar a cabo fraccionamientos biodirigidos que permitan hacer esta afirmaci&oacute;n. Por otro lado, los resultados avalan el uso tradicional de esta planta como protectora de la mucosa g&aacute;strica y plantean la necesidad de continuar con estudios cl&iacute;nicos, pues los mecanismos planteados hacen su uso prometedor.</FONT></FONT>     <BR>&nbsp;      <P><B><FONT FACE="Arial,Helvetica"><FONT SIZE=-1>Agradecimientos</FONT></FONT></B>      <P><FONT FACE="Arial,Helvetica"><FONT SIZE=-1>El presente estudio se llev&oacute; a cabo con el apoyo del Instituto de Investigaciones Farmac&eacute;uticas (INIFAR) de la Facultad de Farmacia y del Centro de Investigaci&oacute;n en Productos Naturales (CIPRONA). Nuestro agradecimiento al Programa Iberoamericano para la Ciencia y Tecnolog&iacute;a para el Desarrollo (CYTED), Subprograma X Qu&iacute;mica Fina Farmac&eacute;utica el apoyo t&eacute;cnico.</FONT></FONT>     <BR>&nbsp;      ]]></body>
<body><![CDATA[<P><B><FONT FACE="Arial,Helvetica"><FONT SIZE=-1>Resumen</FONT></FONT></B>      <P><FONT FACE="Arial,Helvetica"><FONT SIZE=-1>En este estudio se ha investigado el efecto del extracto acuoso bruto de Q. amara a nivel gastrointestinal utilizando varios modelos experimentales en animales. Los resultados muestran que este extracto a dosis de 500 y 1000 mg/kg produce un aumento del tr&aacute;nsito gastrointestinal y que es capaz de inhibir las lesiones inducidas por la indometacina, el alcohol y el estr&eacute;s. Los animales tratados con dosis de 1000 mg/kg mostraron disminuci&oacute;n de la acidez de los contenidos estomacales y de la actividad p&eacute;ptica y un incremento en la cantidad del moco protector de la mucosa.</FONT></FONT>     <BR>&nbsp;     <BR>&nbsp;      <P><FONT FACE="Arial,Helvetica"><FONT SIZE=-1>REFERENCIAS</FONT></FONT>      <!-- ref --><P><A NAME="Aguwa"></A><FONT FACE="Arial,Helvetica"><FONT SIZE=-1>Aguwa, C.N. &amp; G.C. Mittal. 1981. Study of antiulcer activity of aqueous extract of leaves of Pyrenacantha standii (Icacinaceae) using various models of experimental gastric ulcer in rats. Eur.J. Pharmacol. 74: 215-219.</FONT></FONT>    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1122171&pid=S0034-7744199800020000300001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P><A NAME="Anson"></A><FONT FACE="Arial,Helvetica"><FONT SIZE=-1>Anson, M.L. 1938. The estimation of pepsin, trypsin, papain and catepsin with hemoglobin. J. Gen. Physiol. 22: 78-89.</FONT></FONT>    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1122172&pid=S0034-7744199800020000300002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P><A NAME="Arbos"></A><FONT FACE="Arial,Helvetica"><FONT SIZE=-1>Arbos, J., A. Zegri, F.R.J. Lopez-Soriano &amp; J.M. Argiles. 1993. A simple method for determining the rate of gastrointestinal transit in the rat. Arch. Intern. Physiol. Bioch. Biophys. 101: 113-115.</FONT></FONT>    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1122173&pid=S0034-7744199800020000300003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P><A NAME="Brunton"></A><FONT FACE="Arial,Helvetica"><FONT SIZE=-1>Brunton, L. 1996. Agents for control of gastric acicity and treatment of peptic ulcers. In Goodman A. The Pharmacological Basisi of Therapeutics. Mac Graw-Hill, Nueva York, p. 901-915.</FONT></FONT>    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1122174&pid=S0034-7744199800020000300004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P><A NAME="Cáceres"></A><FONT FACE="Arial,Helvetica"><FONT SIZE=-1>C&aacute;ceres, A. 1996. Plantas de uso medicinal en Guatemala. Universidad de San Carlos de Guatemala. Guatemala. 145 p.</FONT></FONT>    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1122175&pid=S0034-7744199800020000300005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P><A NAME="Fischman"></A><FONT FACE="Arial,Helvetica"><FONT SIZE=-1>Fischman, L., L.A. Skorupa, C. Souccar &amp; A.J. Lapa. 1991. The water extract of Coleus barbatus (Benth) decreases gastric secretion in rats. Mem. Inst. Oswaldo Cruz. 86 : 141-143.</FONT></FONT>    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1122176&pid=S0034-7744199800020000300006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P><A NAME="Gamberini"></A><FONT FACE="Arial,Helvetica"><FONT SIZE=-1>Gamberini, M.T., L.A. Skorupa, C. Souccar &amp; A.J. Lapa. 1991. Inhibition of gastric secretion by a water extract from Baccharis triptera. Mem. Inst. Oswaldo Cruz. 86 : 137-139.</FONT></FONT>    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1122177&pid=S0034-7744199800020000300007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><P><A NAME="Garcia"></A><FONT FACE="Arial,Helvetica"><FONT SIZE=-1>Garcia, M.S. Gonzalez &amp; Pazoz 1997. Actividad farmacol&oacute;gicadel extracto acuosos de la madera de Quassia amara (Simarubaceae) en ratas y ratones albinos. Rev. Biol. Trop. 44/45. 47-50.</FONT></FONT>      <!-- ref --><P><A NAME="Glavin"></A><FONT FACE="Arial,Helvetica"><FONT SIZE=-1>Glavin, G. B.&amp; S. Szabo. 1992. Experimetal gastric mucosal injury: laboratory models reveal mechanisms of pathogenesis and new strategies. FASEB 6: 82-830.</FONT></FONT>    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1122179&pid=S0034-7744199800020000300008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P><A NAME="Ko,"></A><FONT FACE="Arial,Helvetica"><FONT SIZE=-1>Ko, J.K.S., C.H. Cho &amp; C.W. Ogif. 1991. The vagus nerve and its non-cholinergic mechanism in the modulation of ethanol induced gastric mucosal damage in rats. J. Pharm. Pharmacol. 46: 29-33</FONT></FONT>    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1122180&pid=S0034-7744199800020000300009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P><A NAME="Lapa"></A><FONT FACE="Arial,Helvetica"><FONT SIZE=-1>Lapa, A.J. 1994. Manual Curso Iberoamericano de Validac&atilde;o de Plantas Medicinais com atividade gastrointestinal. Programa Iberoamericano de Ciencia y Tecnolog&iacute;a para el Desarrollo (CYTED) Subprograma X, Sao Paulo, Brasil, p. 10-12.</FONT></FONT>    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1122181&pid=S0034-7744199800020000300010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P><A NAME="Miller"></A><FONT FACE="Arial,Helvetica"><FONT SIZE=-1>Miller, T.A. 1983. Mechanisms of stress releated mucosal damage Am. J. Med. 83 : 10-12.</FONT></FONT>    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1122182&pid=S0034-7744199800020000300011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P><A NAME="Morton"></A><FONT FACE="Arial,Helvetica"><FONT SIZE=-1>Morton, J.F. 1981. Atlas of Medicinal Plants of Middle America. Charles Thomas, Springfield,. Illinois. 339 p.</FONT></FONT>    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1122183&pid=S0034-7744199800020000300012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P><A NAME="Mosnier,"></A><FONT FACE="Arial,Helvetica"><FONT SIZE=-1>Mosnier, P.,. Rayssiguier Y, C. Molta, E. Pelissier &amp; G. Bommelaer. 1993. Effect of ethanol on rat gastric surfactant. Gastroenterology 104: 179.</FONT></FONT>    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1122184&pid=S0034-7744199800020000300013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P><A NAME="Nuñez"></A><FONT FACE="Arial,Helvetica"><FONT SIZE=-1>Nu&ntilde;ez, E. 1986. Plantas medicinales de Costa Rica y su Folclore. San Jos&eacute;, Universidad de Costa Rica. 241 p.</FONT></FONT>    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1122185&pid=S0034-7744199800020000300014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P><A NAME="Ocampo"></A><FONT FACE="Arial,Helvetica"><FONT SIZE=-1>Ocampo, R.A. 1994. Estado de la Investigaci&oacute;n en Hombre grande (Quassia amara) en Centroam&eacute;rica. Centro Agron&oacute;mico Tropical de Investigaci&oacute;n y Ense&ntilde;anza (CATIE). Turrialba, Costa Rica. p. 1-2.</FONT></FONT>    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1122186&pid=S0034-7744199800020000300015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P><A NAME="Pittier"></A><FONT FACE="Arial,Helvetica"><FONT SIZE=-1>Pittier, H. 1957. Ensayo sobre Plantas Usuales de Costa Rica. Publicaciones de la Universidad de Costa Rica, San Jos&eacute; Costa Rica. 135 p.</FONT></FONT>    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1122187&pid=S0034-7744199800020000300016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P><A NAME="Robert"></A><FONT FACE="Arial,Helvetica"><FONT SIZE=-1>Robert A., J. Adezamis, C. Lancater &amp; A. Hanchar. 1979. Cytoprotection by prostaglandins in rats. Gastroenterology 77: 433-443.</FONT></FONT>    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1122188&pid=S0034-7744199800020000300017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P><A NAME="Sedlak"></A><FONT FACE="Arial,Helvetica"><FONT SIZE=-1>Sedlak, J. &amp; R.H. Lindsay. 1988. Estimation of total protein bound and non protein sulfhydril groups in tissues with Ellman's reagent. Anal. Biochem. 25: 192-205.</FONT></FONT>    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1122189&pid=S0034-7744199800020000300018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P><A NAME="Silen_W"></A><FONT FACE="Arial,Helvetica"><FONT SIZE=-1>Silen, W. 1988. Experimental models of gastric ulceration and injury. Am.J. Physiol. 255, G395-G402.</FONT></FONT>    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1122190&pid=S0034-7744199800020000300019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P><A NAME="Wallace"></A><FONT FACE="Arial,Helvetica"><FONT SIZE=-1>Wallace, J.L. 1992. Prostaglandins, NSAIDs and cytoprotection. 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