Efecto del ácido salicílico y la nutrición mineral sobre la calidad de plántulas de chile habanero
Effect of the salicylic acid and nutrition on quality of habanero pepper seedlings
Effect of the salicylic acid and nutrition on quality of habanero pepper seedlings
Adolfo Guzmán-Antonio2*, Lizette Borges-Gómez2, Luis Pinzón-López2, Esaú Ruiz-Sánchez2, José Zúñiga-Aguilar3*
*Dirección para correspondencia
Resumen
El objetivo del presente estudio fue evaluar el efecto del ácido salicílico y la fertilización con N, P y K en el crecimiento y estado nutricional en plántulas de chile habanero (Capsicum chinense ]]> -8 M de ácido salicílico; T3) aplicación de 190 mg/l de cada nutrimento de NPK y T4) ]]> 10-8 M de ácido salicílico más 190 mg/l de NPK. La calidad de las plántulas se evaluó midiendo características de crecimiento de vástago (hojas + tallo) y raíz. Se analizó también N, P, K, Ca, Mg, Cu, Fe, Zn y Mn en la plántula completa. Se estimó la esbeltez y el índice de calidad de Dickson. Los resultados mostraron diferencias (P≤0,05) en las variables del ]]>
Palabras clave. Capsicum chinense, composición nutrimental.
Abstract
The objective of this study was to evaluate the effect of salicylic acid and N P K fertilization on the growth and mineral status of habanero pepper seedlings ( Capsicum chinense Jacq.). The study was developed in Yucatan, Mexico in November 2008 and December 2009. Seedlings were exposed to four treatments: T1) without salicylic acid and fertilization; T2) application of 10-8 M salicylic acid; T3) application of 190 mg/l de NPK and T4) application of 10-8 M of salicylic acid + 190 mg/l of NPK. The quality of seedlings was evaluated by measuring growth characteristic of shoot and root. The content of N, P, K, Ca, Mg, Cu, Fe, Zn and Mn ]]>
]]> Key words: Capsicum chinense, nutrimental composition.
Introducción
]]> Los chiles pertenecen al género Capsicum, de la familia Solanácea. Existen 27 especies de Capsicum de las cuales cinco son domesticadas y cultivadas: C. annum, C. baccatum, C. chinense, C. frutescens y C. pubescens. El chile habanero (Capsicum ]]> Jacq.) ocupa el primer lugar en producción en Yucatán con una superficie de producción de 262,22 ha a cielo abierto y de 41,14 ha en invernadero (SIAP 2011). El chile habanero se utiliza como fruto fresco o procesado en forma de curtidos, enlatados, pastas, salsas y congelados (González et al. 2006). Otro uso importante del chile es la aplicación de la capsicina en el tratamiento de la salud (Maggi 1992, Vergara et al. 2006).
]]> Uno de los mayores retos en la producción del chile habanero es contar con plántulas sanas, vigorosas y de excelente calidad al momento del trasplante (Preciado et al. 2002). Las hormonas endógenas juegan un papel importante en el crecimiento y desarrollo en la parte aérea y radical (Wang et al. 2009); en las plantas, se reconocen cinco tipos de hormonas de crecimiento: auxinas, citoquininas, giberelinas, ácido abscísico y ]]> et al. 2007).
]]> El ácido salicílico (AS) además de favorecer el crecimiento vegetal, está involucrado en diversos procesos fisiológicos tales como termogénesis, resistencia a patógenos, inducción a la floración, el crecimiento de raíces y absorción de nutrimentos (Hayat et al. 2007, Larqué-Saavedra y Martín-Mex 2007). No obstante, también existen reportes sobre el efecto inhibidor del AS en el crecimiento de raíces como una ]]> et al. (2009) en crisantemos (Chrysantemum morifolium) en donde se favoreció el crecimiento de la planta en diámetro y altura; Gómez y Cepeda (2010) reportaron los beneficios del AS en canola al reducirse las necesidades de riego además de aumentar el número de silicuas y de granos. Por otra parte, Gallego et al. ]]>
]]> El objetivo del presente estudio fue evaluar el efecto del ácido salicílico y la fertilización con N, P y K en el crecimiento y estado nutricional en plántulas de chile habanero (C. chinense Jacq).
Materiales y ]]>
El estudio se desarrolló en el Instituto Tecnológico de Conkal (IT-Conkal) y en el Centro de Investigación Científica de Yucatán (CICY) durante el periodo de noviembre 2008 a diciembre 2009.
La germinación de las ]]>
Los tratamientos evaluados fueron: T1) sin aplicaciones de ácido salicílico y sin fertilización (0AS+0F); T2) con aplicación de ácido salicílico (AS); T3 con aplicación de fertilizante químico (F) y T4) con aplicación de ácido salicílico y fertilizante (AS+F). La dosis de fertilización fue la comúnmente utilizada por los productores de plántulas (solución con ]]> 15, 20, 25, 30, 35, 40, 45 DDG. La dosis de AS (10-8 M) y el volumen ]]> et al. (2009) y Larqué-Saavedra et al. (2010). El volumen aplicado por planta de AS fue de 1 ml y los días de aplicación fueron a los 17, 22, 24 y 26 DDG. Los días en que no se realizaron aplicaciones de los tratamientos las plántulas fueron regadas con agua únicamente.
]]> Para el desarrollo del experimento se utilizó un total de ocho bandejas, dos por tratamiento, para un total de 1600 plántulas, teniendo así 400 plántulas por tratamiento. La distribución de estos se realizó de acuerdo a un diseño de bloques completos al azar con tres repeticiones. Cada una estuvo representada por 120 plantas para hacer un total de 360 por unidad experimental, dejando 40 plantas para el efecto de borde. Para la evaluación de los ]]>
Variables evaluadas. Se realizaron muestreos destructivos a los 30, 40 y 50 DDG. Las fechas fueron elegidas considerando un tiempo de respuesta del AS y la fertilización sobre las características de calidad de las plántulas. En cada ]]>
]]> Se evaluaron características del sistema radical asociadas a la absorción de nutrimentos y agua como: área de la raíz; longitud radical específica (LRE), que describe la relación entre longitud radical (cm) y su biomasa (mg); densidad de peso radical (DPR), la cual describe la masa de raíz producida (mg) por unidad de volumen (cm3) del sustrato o medio en el cual se desarrolla y la densidad de longitud radical (DLR) que describe la longitud de raíz (cm) por unidad de volumen del sustrato ]]> 3).
El área foliar junto con las variables de la raíz se obtuvieron por digitalización de los tejidos para obtener una imagen en un formato tipo TIF. La medición del área foliar y variables de la raíz se realizaron con el programa RootEdge Ver. 2.3 (Kaspar y Ewing 1997). Previo a la digitalización, las raíces fueron ]]>
Al finalizar el desarrollo de la plántula (50 días después de la germinación) se calcularon los siguientes índices morfológicos: relación materia seca del vástago y materia radical (MSV/MSR); el índice de esbeltez mediante la ]]> et al. 1998). El análisis químico de las plantas se llevó a cabo en el Laboratorio de Agua-Suelo-Planta del ]]>
Resultados y ]]>
En general, las plántulas producidas sin fertilización tuvieron un crecimiento pobre independientemente de la aplicación del ácido salicílico. La fertilización química (T3) mostró favorecer la mayoría de las características morfológicas evaluadas. Los resultados obtenidos de cada variable evaluada fueron ]]>
Variables de crecimiento. La materia seca del vástago (MSV), la altura, número de hojas, diámetro del tallo y área foliar (AF) de las plántulas varió significativamente entre tratamientos y días de evaluación (Cuadro 1). En todas las variables de crecimiento los mayores valores se observaron en ]]>
A los 50 días después de la germinación, tiempo en que las plántulas están listas para el trasplante, la mayor producción de MSV (110 mg/planta), y área foliar (447 cm2) se obtuvo en T3, mientras que la mayor altura ]]>
El efecto del AS en la altura de plántulas ha sido observado en tomate en el cual se incrementó el 14,8% con aplicaciones de 10-6 M de AS (Larqué-Saavedra et al. 2010). Los efectos del AS se han reflejado también en un aumento en la producción de biomasa en soya y pino (San Miguel et al. 2003) y ]]> et al. 1995). De acuerdo a Salisbury y Ross (1994) las modificaciones tenidas en el crecimiento se deben a que el ácido salicílico fomenta la producción de ácido indolacético y de ácido naftalenacético que son reportados como los principales reguladores de crecimiento vegetal. Sin embargo, en este estudio el efecto positivo del ácido salicílico se obtuvo solamente cuando las plántulas recibieron fertilización química.
]]> En cuanto al crecimiento de la raíz, se presentaron diferencias significativas solamente a los 50 días después de la germinación en MSR, LRE y DPR (Cuadro 2), mientras que el área de raíz y DLR mostraron diferencias durante el crecimiento de la plántula.
]]> Con las aplicaciones de AS se tuvo menor producción de MSR; su efecto puede observarse en T2 (8 mg/planta) y en su uso combinado con la fertilización química T4 (7 mg/planta). Por el contrario, la aplicación única del fertilizante químico mostró la mayor MSR. Este efecto inhibitorio del AS ha sido también reportado por Saxena y Rashid (1980), causado posiblemente por toxicidad. Sin embargo, otros estudios realizados sobre el uso de diferentes dosis de ácido salicílico en cultivos como en pino, crisantemo (Catharanthus ]]> ) y tomate mostraron incrementos en la producción de MSR (San Miguel et al. 2003, Villanueva-Couoh et al. 2009, Echeverría-Machado et al. 2007, Larqué-Saavedra et al. 2010). Esto sugiere la importancia de realizar nuevos experimentos donde se evalúe el efecto de diferentes dosis de ácido salicílico en chile habanero.
La fertilización química conjuntamente con hormonas endógenas tiene un papel importante en el crecimiento de la raíz (Wang et al. 2009); esto concuerda con lo observado en T4 (AS+F) al obtenerse una mayor longitud por unidad de biomasa de raíz ]]>
Por el contrario, las aplicaciones aisladas de AS (T2) y de fertilización química F (T3) registraron en 47 y 42% menor en el crecimiento que con la combinación de ambos (F+AS). El valor alto de LRE en T4 está relacionado con la ]]> 3 de suelo, o sustrato como en este caso, tienen un menor diámetro que les permite una mayor proliferación. En este estudio el menor valor de DPR fue para T4 (0,25 mg/cm3) coincidiendo con el mayor valor para LRE para este mismo tratamiento.
]]> En cuanto al área radical, esta es una característica de la cual depende en gran medida la absorción de nutrimentos, ya que a mayor área superficial se tiene mayor superficie de contacto para realizar la absorción de nutrimentos.
Diferentes estudios señalan que el movimiento de K y P hacia la ]]> 2 de raíz se realiza a una velocidad de entre 3,3x10-4 y 4,8x10-4 mM/s (Borges-Gómez et al. 2006). El N se mueve principalmente por flujo de masa pero hasta el momento, al igual que para P, no se tiene infor¬mación sobre su absorción por unidad de ]]> 2 respectivamente), indicando que la fertilización química favoreció esta variable.
En la evaluación de los índices de crecimiento a los 50 DDG, la relación entre MSV:MSR varió entre 5,13 en el T2 ]]> Cuadro 3). De acuerdo a Baston-Wilson (1988) los cambios en las relaciones de MSV:MSR pueden ser atribuibles a deficiencias de macronutrimentos, agua y CO2. Según el modelo de Thornley (1972), los factores que determinan la relación MSV:MSR son los suministros de C y N en la parte aérea y la raíz respectivamente. Así que cuando decrece la adquisición de C se tiene un incremento en la relación MSV:MSR, mientras que cuando decrece el suministro de N puede causarse el decremento de esta ]]>
La relación entre MSV:MSR aumentó de 7,86 en las plántulas que recibieron fertilización a 12,70 cuando se combinó fertilización con AS. La alta relación entre MSV/MSR en T4 (AS+F) fue ocasionada por la baja producción de biomasa de raíz (7 mg/planta), probablemente debido a un efecto inhibitorio del AS.
Las variables de cociente de esbeltez e índice de Dickson (Dickson et al. 1960) han sido utilizados para evaluar la calidad de plántulas en diversos cultivos; por ejemplo en pino (Reyes-Reyes et al. 2005), café (Arizaleta y Pire 2008), vara de perlilla (MendozaBautista et al. 2011) entre otros. Estas variables relacionan las características de altura, diámetro del tallo y la producción de masa seca, y aún cuando no han sido utilizados para medir la calidad de plántulas hortícolas, sus aplicaciones pueden ser útiles para evaluar la calidad de las plántulas producidas en contenedores.
En este estudio, el cociente de esbeltez varió entre 2,92 para T2 (AS) y 4,64 para T4 (F+AS). Por otro lado, el índice de Dickson varió entre 5,58 para T4 (F+AS) y 10,19 para T3 (F), mostrando que la mayor esbeltez y vigor en las plántulas se tuvieron en T3 y T4, esto sugiere para estos dos tratamientos una mayor sobrevivencia del trasplante y un mejor desarrollo en campo. No obstante, en el índice de Dickson fue T3 quien mostró el menor valor y esto se debe a que este índice considera la relación de la masa seca total de la plántula (T3 = 96 mg) y la suma del cociente de esbeltez (altura/diámetro T3 = 4,64) y la relación MSV:MSR (T3 = 12,7). Por lo tanto, el valor bajo del índice de Dickson se debe a la baja producción de biomasa radical. Debe tomarse en cuenta que estos índices de calidad son utilizados por primera vez en cultivos hortícolas, por lo que deberán realizarse más estudios en estas especies.
Extracción nutrimental. Los resultados de contenido de nutrimentos en las plántulas mostraron diferencias (p>0,0001) en todos los minerales estudiados (N, P, K, Ca, Mg, Cu, Fe, Zn y Mn). En el tratamiento T3 (F) se registraron los mayores contenidos de nutrimentos en tejido con excepción de K, Fe y Zn, los cuales fueron similares a T4 (F+AS) (Figura 1); con estos resultados se destaca el efecto de la fertilización y la combinación de este con el ácido salicílico en la nutrición de las plántulas.
Cada especie tiene requerimientos particulares de nutrimentos que permiten un crecimiento y un vigor óptimo (Timmer y Armstrong 1987); estos requerimientos no son constantes y cambian según las plantas y el medio donde crecen y se desarrollan. Por ejemplo, en la producción de plántulas de chile jalapeño, Preciado et al. (2007) reportaron contenidos entre 12,6 y 28,7 mg por planta de N; entre 0,93 y 1,11 de P y entre 9,9 y 14 mg de K; quedando solamente el contenido de N del T3 en plántulas de chile habanero entre el rango reportado para chile jalapeño. Estas diferencias se atribuyen a la biomasa producida.
En trabajos anteriores realizados en plántulas de melón donde se evaluó el efecto de la aplicación de diferentes soluciones nutritivas, se observó un mayor crecimiento y acumulación de nutrimentos en las plántulas al igual que en este trabajo (Preciado et al. 2002). En general, la práctica de aplicar soluciones nutritivas en la producción de plántulas constituye una alternativa para obtener estas de buena calidad. En chile habanero se observó que la fertilización química (T3) aumentó el contenido de minerales en las plántulas al contrario que con el ácido salicílico la absorción de algunos nutrimentos (K, Fe y Zn) fue igual.
Interacciones de las variables de crecimiento y la nutrición de las plántulas. Estudios realizados en tejido de tabaco bajo diferentes condiciones de nutrición y de irradiación, mostraron una relación significativa (R2= 0,84) entre MSV: MSR y el contenido de N convertido en proteína soluble (Andrew et al. 2006). La relación entre MSV: MSR y el contenido de N total en plántulas de chile habanero fue similar (R2 = 0,88) (Figura 2).
Otras relaciones significativas se observaron entre MSV: MSR y los contenidos de K, Ca, Zn y Mn; mientras que la relación entre MSV: MSR y los contenidos de P, Mg, Fe y Cu no fue significativo. En cuanto a las relaciones existentes sobre la absorción de nutrimentos y las características de la raíz, estudios previos señalan que el factor más importante que influye en la absorción de nutrimentos es la longitud y el área superficial (Barber 1984, Tinker y Nye 2000), esto explica las altas relaciones encontradas en el análisis de regresión entre estas dos variables (Cuadro 4), indicando que a un mayor contenido nutrimental se tendrá un mejor desarrollo de la raíz. ]]>
Del mismo modo, se observó una relación positiva entre las variables de crecimiento del vástago y el contenido de nutrimentos en la plántula (Cuadro 5), mostrando las tendencias entre el estatus nutrimental de la plántula y las características de la plántula. Los resultados de los valores de las ecuaciones pueden ser utilizados para calcular los valores de cada nutrimento de acuerdo a las características de crecimiento de la plántula. En este sentido, es posible predecir el estado nutricional mediante la aplicación de dichas ecuaciones.
Las aplicaciones del ácido salicílico (10-8 M) en combinación con fertilización de N, P y K (190 mg/l de N-P2O5-K2O) solo incrementaron la altura, número de hojas y longitud radical específica de las plántulas en chile habanero. Todas las demás variables de crecimiento se ven favorecidas al emplear únicamente la fertilización química; el ácido salicílico solamente tiene efectos favorables cuando las plantas reciben fertilización química y por sí solo no favorece el crecimiento de las plántulas de chile habanero.
Literatura citada
Andrew, M; Raven, JA; Lea, PJ; Sprent, JI. 2006. A role for shoot protein in shoot–root dry matter allocation in higher plants. Annals of Botany 97:3-10. [ Links ]
AOAC (Association of Official Analytical Chemist). 2000. Official methods of analysis. 17 ed. Gaithersg, Maryland, USA. p. 3-25. [ Links ]
Arizaleta, M; Pire, R. 2008. Respuesta de plántulas de cafeto al tamaño de la bolsa y fertilización con nitrógeno y fósforo en vivero. Agrociencia 42:47-55. [ Links ]
Barber, SA. 1984. Soil nutrient bioavailability: A mechanistic approach. Wiley & Sons, Inc., New York, USA. 398 p. [ Links ]
Bastow-Wilson, J. 1988. A review of evidence on the control of shoot: root ratio, in relation to models. Annals of Botany 61: 433-449. [ Links ]
Birchler, T; Rowse, RW; Royo, A; Pardos, M. 1998. La planta ideal: Revisión del concepto, parámetros definitorios e implementación práctica. Investigación Agraria Sistemas de Recursos Forestales 7(1-2):109-121. [ Links ]
Borges-Gómez, L; Chuc-Puc, J; Escamilla-Bencomo, A; Medina-Lara, F. 2006. Cinética de la absorción de potasio por las raíces de chile habanero (Capsicum chinense Jacq.). Agrociencia 40:431-440. [ Links ]
Dickson, A; Leaf, AL; Hosner, IE. 1960. Quality appraisal of white spruce and white pine seedlings stock in nurseries. Forest Chronicle 36:10-13. [ Links ]
Echeverría-Machado, I; Escobedo Gracía-Medrano, RM; Larqué-Saavedra, A. 2007. Responses of transformed Catharanthus roseus roots to femtomolar concentrations of salicylic acid. Plant Physiology and Biochemestry 45:501-507. [ Links ]
Eissenstat, DM. 1991. On the relationship between specific root length and rate of root proliferation: a field study using citrus rootstocks. New Phytologist 118:63-68. [ Links ]
Gallego, GL; Escamilla, TL; Jackson, LA; Dixon, RA. 2011. Salicylic acid mediates the reduced growth of lignin down-regulated plants. Plant Biology 108(51):20814-20819. [ Links ]
Gómez, LBL; Cepeda, VMA. 2010. Ácido salicílico: inductor de resistencia a sequía en canola de riego bajo labranza reducida. Folleto técnico No. 2 SAGARPA. INIFAP-CIRPAC. Uruapan, Mich., México. 48 p. [ Links ]
González, TE; Gutiérrez, L; Contreras, F. 2006. El chile habanero de Yucatán. Usos culinarios tradicionales del chile habanero. Ciencia y Desarrollo. El conocimiento a tu alcance. Consejo Nacional de Ciencia y Tecnología. México. Consulta 15 ene 2007. Disponible en http://www.conacyt.mx/comunicacion/revista/195/Articulos/Chilehabanero/Habanero00.html. [ Links ]
Hayat, S; Ali, B; Ahmad, A. 2007. Salicylic acid: Biosynthesis, metabolism and physiological role in plants p. 1-11. In Hayat, S; Ahmad, A. eds. Salicylic acid a plant hormone. Springer. Dordrecht, The Netherlands. 401 p. [ Links ]
Kaspar, TC; Ewing, RP. 1997. Rootedge. Software for measuring root length from desktop scanner images. Agronomy Journal 89:932-940. [ Links ]
Larqué-Saavedra, A; Martín-Mex, R. 2007. Effects of salicylic acid on the bioproductivity of plants p. 15-24. In Hayat, S; Ahmad, A. eds. Salicylic acid a plant hormone. Springer. Dordrecht, The Netherlands. 401 p. [ Links ]
Larqué-Saavedra, A; Martín-Mex, R; Nexticapan-Garcéz, A; Vergara-Yoisura, S; Gutiérrez-Rendón, M. 2010. Efecto del ácido salicílico en el crecimiento de plántulas de tomate (Lycopersicon esculentum Mill.). Revista Chapingo Serie Horticultura 16(3):183-187. [ Links ]
Maggi, CA. 1992. Therapeutic potential of capsaicinlike molecules–studies in animals and humans. Life Science 51:1777-1781. [ Links ]
McSteen, P; Zhao, Y. 2008. Plant hormones and signaling: common themes and new developments. Development Cell 14(4):467-73. [ Links ]
Mendoza-Bautista, C; García-Moreno, F; Rodríguez-Trejo, DA; Castro-Zavala, S. 2011. Radiación solar y calidad de planta en una plantación de vara de perlilla (Symphoricarpos microphyllus H. B. K.). Agrociencia 45: 235-243. [ Links ]
Montaño-Mata, NJ; Núñez, JC. 2003. Evaluación del efecto de la edad de trasplante sobre el rendimiento en tres selecciones de ají dulce Capsicum chinense Jacq. en Jusepín, estado Monagas. Revista de la Facultad de Agronomia (LUZ) 20:144-155. [ Links ]
Preciado, RP; Baca, GA; Tirado, JL; Kohashi-Shibata, J; Tijerina, L; Martínez, A. 2002. Nitrógeno y potasio en la producción de plántulas de melón. Terra 20:267-276. [ Links ]
Preciado, RP; Lara-Herrera, A; Segura, CMA; Rueda, PEO; Orozco, VJA; Yescas, CP; Montemayor, TJA. 2007. Amonio y fosfato en el crecimiento de plántulas de chile jalapeño. Terra Latinoamericana 26:37-42. [ Links ]
Reyes-Reyes, J; Aldrete, A; Cetina-Alcalá, VM; LopezUpton, J. 2005. Producción de plántulas de Pinus pseudostrobus var. Alpuncensis en sustratos a base de aserrín. Revista Chapingo Serie Ciencias Forestales y del Ambiente 11(2):105-110. [ Links ]
Salisbury, FB; Ross, CW. 1994. Fisiología vegetal. Traducido por González, V. V. Edit. Iberoamérica, México. 673 p. [ Links ]
San Miguel, R; Gutiérrez, M; Larqué-Saavedra, A. 2003. Salicylic acid increases the biomass accumulation of Pinus patula. Southern. Journal of Applied Forestry 27:52-54. [ Links ]
Savaldi-Goldstein, S; Peto, C; Chory, J. 2007. The epidermis both drives and restricts plant shoot growth. Nature 446:199-202. [ Links ]
Saxena, PK, Rashid, A. 1980. Differentiation on bud cell on the protonema of the moss Anoectanquium fhomsonii. Effect of aspirina and salicyc acid. Z. Pflanzenphysiology 99:187-189. [ Links ]
Shettel, NL; Balke, NE. 1983. Plant growth response to several allelopathic chemicals. Weed Science 31:293-298. [ Links ]
SIAP (Sistema de Información Agroalimentaria y Pesca). Anuario estadístico de la producción agrícola. Gobierno Federal. México. (en línea). Consultado 19 septiembre 2012. Disponible en http://www.siap.gob.mx. [ Links ]
Thornley, JHM. 1972. A balanced quantitative model for root: shoot ratios in vegetative plants. Annals of Botany 68:211-216. [ Links ]
Timmer, VR; Armstrong, G. 1987. Growth and nutrition of containerized Pinus resinosa at exponentially increasing nutrient additions. Canadian Journal of Forest Research 17:644-647. [ Links ]
Tinker, PB; Nye, PH. 2000. Solute movement in the rhizosphere. Oxford University Press. USA. 444 p. [ Links ]
Villanueva-Couoh, E; Alcántar-González, G; Sánchez-García, P; Soria-Fregoso, M; Larque-Saavedra, A. 2009. Efecto del ácido salicílico y dimetilsulfóxido en la floración de [Chrysanthemum morifolium (Ramat) Kitamura] en Yucatán. Revista Chapingo Serie Horticultura 15(2):25-31. [ Links ]
Vergara, D; Lozada-Requena, I; Aguilar, OJ. 2006. Efecto de la capsicina sobre la producción de TN F-α en células mononucleares. Estudio piloto. Revista Peruana de Medicina Experimental y Salud Pública 23(1):52-55. [ Links ]
Wang, B; Tao, L; Qi-Wei, H; Xing-Ming, Y; Qi-Rong, S. 2009. Effect of N fertilizers on root growth and endogenous hormones in strawberry. Pedosphere 1:86-95. [ Links ]
Zhao, HJ; Lin, XW; Shi, HZ; Chang, SM. 1995. The regulating effects of phenolic compounds on the physiological characteristics and yield of soybeans. Acta Agronómica Sinica 21:351-355. [ Links ]
*Correspondencia a:
Adolfo Guzmán-Antonio. División de Estudios de Posgrado e Investigación del Instituto Tecnológico de Conkal. Km 16.3 antigua carretera Mérida-Motul. Conkal, Yucatán, México. CP 97345. adolfoalberto10@hotmail.com.
Lizette Borges-Gómez. División de Estudios de Posgrado e Investigación del Instituto Tecnológico de Conkal. Km 16.3 antigua carretera Mérida-Motul. Conkal, Yucatán, México. CP 97345. lizette_borges@hotmail.com (autor para correspondencia).
Luis Pinzón-López. División de Estudios de Posgrado e Investigación del Instituto Tecnológico de Conkal. Km 16.3 antigua carretera Mérida-Motul. Conkal, Yucatán, México. CP 97345. lpinlo@yahoo.com. mx; esauruizmx@yahoo.com.mx.
Esaú Ruiz-Sánchez. División de Estudios de Posgrado e Investigación del Instituto Tecnológico de Conkal. Km 16.3 antigua carretera Mérida-Motul. Conkal, Yucatán, México. CP 97345. esauruizmx@yahoo.com.mx.
José Zúñiga-Aguilar. Centro de Investigación Científica de Yucatán, México. zuniga@cicy.mx
1. Este trabajo forma parte de la tesis de Maestría en Ciencias en Horticultura Tropical del primer autor.
2.División de Estudios de Posgrado e Investigación del Instituto Tecnológico de Conkal. Km 16.3 antigua carretera Mérida-Motul. Conkal, Yucatán, México. CP 97345. adolfoalberto10@hotmail.com; lizette_borges@hotmail.com (autor para correspondencia); lpinlo@yahoo.com.mx; esauruizmx@yahoo.com.mx;
3. Centro de Investigación Científica de Yucatán, México. zuniga@cicy.mx
]]>
Recibido: 15 de enero, 2012. Aceptado: 9 de octubre, 2012.