Fecundidad de la medusa Stomolophus meleagris(Rhizostomeae: Stomolophidae) en el Golfo de California Stomolophus meleagris fecundity (Rhizostomeae: Stomolophidae) in the Gulf of California
Liliana Carvalho Saucedo2*,1*, Juana López Martínez2 & Federico García Domínguez1
The cannonball jellyfish Stomolophus meleagris is regarded as a fishery resource with high commercial value, but with scarce biological information. With the aim to generate preliminary information on reproductive aspects, the present study analyzes its fecundity, based on the estimated number of vitellogenic oocytes in the gonad; in addition, we evaluated its relationship with the jellyfish body length, diameter and wet weight; and we established the relationship of the gonadosomatic index (IGS) with the jellyfish diameter and length. For this, a total of 30 specimens were collected, measured and weighed in a monthly basis, in Las Guásimas lagoon from January to May 2006. In order to estimate the gonad volume, 60 mature females were analyzed and their gonads were extracted and stained with hematoxylin-eosin. Gonad images from histological preparations were analyzed and the number of vitellogenic and previtellogenic oocytes obtained. We used catch data from The Guásimas for population recruitment analysis, that was estimated with FISAT II. Among results, we found that fecundity increased with jellyfish length, diameter and total wet weight. The lower fecundity rates occured on February and the highest during May (11 873 071 and 37 528 197 millions of vitellogenic oocytes per gonad, respectively). The IGS increased with length and diameter of the specimens, at its maximum value of 3.7% was observed in May. A continuous production of previtellogenic oocytes were observed during the full collection period. The maximum recruitment was observed in July and November (37.50% and 28.01% respectively). The high fecundity observed in S. meleagris, suggests a high population reproductive potential that may support the possibility of an important fishery consolidation on this jellyfish.
La medusa Stomolophus meleagris es considerada un recurso pesquero de alto valor comercial. Debido a la relevancia de conocer aspectos de importancia biológica actualmente desconocidos, el presente trabajo analiza la fecundidad con base en la estimación del número de ovocitos vitelogénicos en la gónada; su relación con la longitud, diámetro y peso húmedo; y la relación del índice gonadosomático (IGS) con su diámetro y longitud. De enero a mayo 2006 se recolectaron 30 ejemplares mensuales que fueron medidos y pesados, de los cuales se analizaron 60 hembras maduras para calcular el volumen de sus gónadas. Se extrajeron las gónadas, se tiñeron con hematoxilina-eosina y se seleccionaron las hembras con madurez gonadal. Mediante la digitalización de imágenes se estimó el número de ovocitos vitelogénicos y previtelogénicos. Se emplearon datos de captura en Las Guásimas para el análisis de reclutamiento poblacional, estimado con FISAT II. La fecundidad se incrementó con la longitud, el diámetro y el peso húmedo total. La menor fecundidad se observó en febrero y la mayor en mayo (11 873 071 y 37 528 197 millones de ovocitos vitelogénico por gónada, respectivamente). El IGS se incrementó con la longitud y diámetro de los ejemplares, con su máximo en mayo de 3.7%. Se observó una producción continua de ovocitos previtelogénicos en todo el periodo de recolecta. El máximo reclutamiento se observó en julio y noviembre (37.50% y 28.01% respectivamente). La alta fecundidad encontrada en S. meleagris sugiere un alto potencial reproductivo para la población y sustenta la posibilidad de la consolidación de una importante pesquería de esta medusa.
Palabras clave: medusa, Stomolophus meleagris, bola de cañón, fecundidad, Golfo de California, México.
Las medusas pertenecientes a la ]]>
et al. 2001).
En México las frecuentes apariciones de la medusa comestible Stomolophus meleagris L. Agassiz ]]>
Las investigaciones existentes de ]]>
S. meleagris, incluyen la descripción del ciclo de vida (Calder 1982), distribución y abundancia (Gómez-Aguirre 1991, Ocaña-Luna & Gómez-Aguirre 1999, Segura-Puertas et al. 2003), técnicas de captura y su importancia como recurso pesquero (Huang 1988, Omori & Nakano 2001, Tunberg & Reed 2004), descripción de su ultraestructura ovárica (Eckelbarger & Larson 1992), análisis de la actividad proteolítica de proteínas en los ]]>
et al. 2009), biología reproductiva y su relación con la variación del contenido de proteínas y lípidos (triglicéridos y fosfolípidos) (Carvalho-Saucedo et al. 2010, Carvalho-Saucedo et al. 2011).
Como parte de su ]]>
S. meleagris presenta de manera temporal, crecimientos poblacionales masivos (en fase medusa), para luego desaparecer del lugar, situación que indica la etapa final de la fase medusoide (Holst et al. 2007). Por lo que, el estudio de la fecundidad y la incorporación de nuevas medusas resulta de suma importancia en el contexto del manejo pesquero. Sin embargo, a pesar de la importancia de
S. melagris como recurso potencial, a la fecha no existe ningún estudio sobre su fecundidad. Entre los métodos más empleados para evaluar la fecundidad estan el método gravimétrico (Murua et al. 2003), el conteo directo de los huevos (Cabrera-Peña et al. 2001) y el conteo de ovocitos hidratados (Olney & McBride 2003). Estos métodos han sido ]]>
Merluccius gayi con el incremento en talla ]]>
et al. 2004), por lo que puede ser empleado como un indicador de la condición reproductiva de una especie. Para S. meleagris actualmente no existen trabajos sobre este aspecto.
Debido a la importancia de la fecundidad en el contexto del manejo pesquero, el presente trabajo ]]>
Stomolophus meleagris en la laguna Las Guásimas (México), para estimar su relación con algunas variables morfométricas y determinar el índice gonadosomático como un probable indicador reproductivo.
Materiales y Métodos
Los ejemplares fueron recolectados durante el periodo de ocurrencia de Stomolophus meleagris en la laguna costera Las Guásimas, localizada en Sonora, México entre los 27°49’ - 27°55’ N - 110°29’ - 110°40’ W de enero a mayo 2006. Para la captura de los animales se utilizó una red especial, conformada por un aro metálico de 5” de ]]>
]]>
Adicionalmente, se recolectaron 30 ejemplares de S. meleagris por mes y se midió la longitud (del inicio de la campana hasta el final de los brazos orales), el diámetro de campana y peso húmedo total. Posteriormente, las gónadas fueron extraídas y deshidratadas con alcohol etílico, aclaradas con xileno e incluidas en parafina. De las gónadas se cortaron secciones transversales de 4µm de grosor y se tiñeron con hematoxilina-eosina (Humason 1979). ]]>
et al. 2001), se estimó el número de ovocitos previtelogénicos y vitelogénicos por imagen. En cada imagen de (0.49x0.66mm) se trazó una retícula de siete por nueve cuadros y 48 intersecciones. De cada hembra analizada, se emplearon tres imágenes para el conteo (dos como réplica). El volumen de ]]>
3) se calculó con la ecuación: vr=L1xL2xL3, donde vr=volumen de la imagen, L1=altura de la imagen, L2=longitud de la imagen y L3=grosor de la imagen (corte histológico).
La fecundidad se estimó con la razón: F=(vg x To)/vr, donde F=Fecundidad, vg=volumen total de la masa gonádica, To=Total de ovocitos vitelogénicos ]]>
El índice gonadosomático (IGS) fue calculado mensualmente en hembras en estadios de previtelogénesis avanzada y madurez (empleadas para estimar fecundidad) de acuerdo a la ecuación: IGS=(Peso de la gónada/Peso total del cuerpo)x100 ]]>
Se estudiaron las variaciones mensuales de fecundidad e IGS por medio de un análisis de varianza de medias. Cuando las diferencias fueron significativas se aplicó una prueba a posteriori para comparación de medias (Tukey), con el programa STATISTICA (versión 6.1).
Adicionalmente se estimó el número de ovocitos previtelogénicos y la fecundidad por intervalos de longitud (de 0.5cm) en cada mes de recolecta. También, el patrón de reclutamiento; y con la finalidad de tener una mejor estimación de la población se emplearon datos de captura (n=1 333) realizados en la laguna Las Guásimas de enero a mayo 2006. El reclutamiento se evaluó por medio de una subrutina del paquete computacional FISAT II versión 1.1 (Gayanilo et al. 2005), que se basa en reconstruir los pulsos de reclutamiento a partir de datos de frecuencias de tallas y de esta manera determinar el número de pulsos por año y la fuerza relativa de estos. Debido a que la rutina para estimar reclutamiento del programa FISAT II, requiere de la estimación previa de to se empleó la ecuación empírica de Pauly (1987).
Resultados
El análisis de regresión de peso húmedo de la masa gonádica con el volumen despla- zado, mostró una relación de tipo potencial de la siguiente forma: Vd=4.704 (Wh)0.7415, Vd = a(peso húmedo de gónada)b donde Vd es el volumen desplazado por la gónada, Wh es peso húmedo total, a y b son constantes (y=axb), con una r = 0.955. Por su parte, el análisis de regresión de peso seco de tejido gonadal con volumen desplazado, mostró una relación potencial de la siguiente forma: Vd=25.515 (Wg)0.4940, donde Vd es el volumen desplazado de la masa gonádica, Wg es peso seco de tejido gonadal, a y b son constantes (y=axb), con una r=0.931. Como consecuencia de que el mejor ajuste se observó entre el volumen desplazado por la gónada y el peso húmedo de la misma, éste se empleó para estimar el volumen de la masa gonádica en el cálculo de fecundidad.
Del total de individuos evaluados, se encontró un total de 22 hembras en previtelogénesis avanzada y 34 en madurez, durante el período febrero a mayo. Al comparar la fecundidad con parámetros biométricos, ésta mostró un incremento con el aumento de la longitud, diámetro y peso húmedo total. La relación de la longitud (Lt) y la fecundidad fue exponencial (y=axb), donde a=13 955 y b=5 735, con una r=0.891 (Fig. 1A). De igual forma la fecundidad con el diámetro (D) presentaron una relación exponencial (y=axb), donde a=3 290 y b=5 446, con una r=0.831 (Fig. 1B). La relación entre la fecundidad y el peso húmedo total (Pt) fue lineal (y =a+bx), donde a=-28 384 y b=30 737, con una r=0.817 (Fig. 1C).
Por otra parte, el IGS se incrementó con el aumento de la longitud y diámetro. La relación del IGS y la longitud fue lineal (y=a+bx), donde a=0.0001 y b=0.256, con una r=0.788 (Fig. 2A). De igual manera la relación del IGS y el diámetro fue lineal (y=a+bx), donde a=0.000084 y b=0.160, con una r=0.786 (Fig. 2B).
No se observaron hembras con madurez gonadal en enero. El menor valor de fecundidad se observó en febrero (11 873 071 millones de ovocitos vitelogénicos por gónada) con diferencias significativas en marzo, abril y mayo. El mayor valor de fecundidad ocurrió en mayo (37 528 197 millones de ovocitos vitelogénico por gónada) con diferencias significativas en febrero, abril y marzo (Fig. 3). El promedio de fecundidad durante todo el periodo reproductivo fue de 24 700 634 ovocitos vitelogénicos por gónada. ]]>
El IGS mensual mostró una tendencia similar a los valores mensuales de fecundidad. El menor IGS se observó en abril (2.4%) y fue significativamente diferente del mayor IGS (3.7%) observado en mayo (Fig. 3).
En febrero el número de ovocitos previtelogénicos por gónada fue mayor que la fecundidad (número de ovocitos vitelogénicos/gónada) en todos los intervalos de longitud. Se observó un aumento de la fecundidad con la longitud y la producción constante de ovocitos previtelogénicos de febrero a mayo. En longitudes menores a 7cm, la cantidad de ovocitos previtelogénicos fue mayor que la de ovocitos vitelogénicos (Fig. 4).
Los valores de t0 para la población a partir de la ecuación de Pauly (1987) fue de -0.0028. Se observó el inicio de reclutamiento en marzo, aunque con un bajo porcentaje de reclutas (0.01%). El valor máximo de reclutamiento (37.50%) ocurrió en julio. Después de este mes se observó una disminución del reclutamiento hasta octubre y un nuevo aumento en noviembre de 28.01% (Fig. 5).
Discusión
Se ha sugerido que las medusas ]]>
et al. 2008), no obstante, hasta ahora son escasos los trabajos sobre el tema, a pesar que es una característica biológica que se ha empleado como un indicador del potencial reproductivo, para estimar el grado de reclutamiento en la población (Velázquez-Abunader et al. 2010). Los resultados obtenidos confirman que S. meleagris presenta una alta fecundidad con un promedio anual mayor a 24 700 634 millones ]]>
La fecundidad puede o no presentar ]]>
et al. 2010). Según lo encontrado en el presente estudio existe una relación de la fecundidad con longitud, diámetro y peso húmedo, de tal manera que las medusas más fecundas fueron las de mayor talla y peso. Aunque este resultado sugiere que la pesca de medusas grandes podría traer un impacto importante al reclutamiento de las mismas, otras características como la talla de primera madurez y la duración del periodo reproductivo pueden ]]>
Aurelia aurita se ha visto que la periodicidad del reclutamiento de las larvas plánulas, depende en gran medida del tiempo de permanencia de organismos sexualmente maduros (Lucas 2001). En Nemopilema nomurai se observó que los ejemplares heridos aceleraron la maduración gonádica independientemente de la talla (Ohtsu et al. 2007). ]]>
Por otro lado la relación obtenida entre el IGS y las tallas (longitud y diámetro de medusa), al igual que la fecundidad se incrementó con la talla; lo que significa que durante el crecimiento ocurrió un aumento en la proporción de la gónada y en el número de ovocitos. Aunque esta relación obtenida en S. meleagris no ha ]]>
Hymenocephalus italicus, Nezumia sclerorhynchus y Coelorhynchus coelorhynchus se ha encontrado que el IGS presenta un aumento significativo con la talla (D’Onghia et al. 1999). La coincidencia del IGS con la fecundidad y la ocurrencia de su relación con la talla, indican que el IGS puede ser considerado como un indicador de la condición reproductiva de
S. meleagris. Además, la disminución de la fecundidad en abril, incluso en las medusas de mayor talla, coincidió con la disminución del IGS. Esto se ha reportado también en las medusas Aurelia aurita y Olindias sambaquiensis, donde el decremento del índice gonadosomático estuvo relacionado con la liberación de gametos (Lucas & Lawes 1998, Chiaverano et al. 2004). De aquí ]]>
Por otra parte, la mayor fecundidad observada en mayo coincidió con lo reportado S. meleagris por Carvalho-Saucedo et al. 2010, donde en mayo 2005 se observó la ]]>
A. aurita la acumulación de lípidos durante la vitelogénesis depende de la disponibilidad y calidad de alimento; por su parte ]]>
et al. 2011); esto y el notable incremento de fecundidad e IGS de enero a mayo, sugieren la previa acumulación de reservas energéticas durante el desarrollo gonadal de S. ]]>
, así como, la importancia de la disponibilidad de alimento para un mayor desempeño reproductivo.
Las técnicas para la determinación de fecundidad son diversas (Murua et al. 2003, Kang et al. 2003), pero en la ]]>
et al. 2003).
La ventaja de la metodología ]]>
et al. (2010) en S. meleagris en la laguna Las Guásimas (Sonora), donde en febrero ocurre el inicio del desarrollo gonadal tras un incremento en abril y mayo, los autores agregan que esta especie presenta una gametogénesis continua durante su permanencia en la zona. Por esto, la presencia de ovocitos ]]>
S. meleagris. Este comportamiento de desoves prolongados ya ha sido reportado en otras medusas Scyphozoa en el medio natural (Eckelbarger & Larson 1992) y en laboratorio (Morandini & Da Silveira 2001). También se ha visto en otras especies, como en el pez Chirostoma humboldtianum, el cual mantiene el proceso de la ]]>
et al. 2008).
El análisis de reclutamiento de la población mostró reclutas de marzo a noviembre sin embargo, la presencia de medusas en la zona finalizó en ]]>
A. aurita ocurrieron después del reclutamiento de plánulas (entre julio y ]]>
En conclusión, la medusa S. meleagris es una especie de altas tasas de fecundidad, que durante su permanencia en la laguna Las Guásimas presenta una continua gametogénesis y cuyas ]]>
Agradecimientos ]]>
Esta investigación fue financiada con los proyectos del Centro de Investigaciones Biológicas del Noroeste, S.C. clave interna 920 y de CONACYT Ciencia Básica 038-C, se agradece al Laboratorio de Pesquerías de la Unidad Sonora (CIBNOR), especialmente a Eloisa Herrera, Rufino Morales y Jesús Padilla; a Ma. Carmen Rodríguez y Eulalia Meza C. del laboratorio de análisis histológicos (CIBNOR).
Referencias
Alarcón, C., L. Cubillos & C. Oyarzun. 2004. Influence of female size on the duration and intensity of the reproductive activity of Merluccius gayi gayi off central-south Chile. Invest. Mar. Valparaíso 32(2): 59-69. [ Links ]
Blancas-Arroyo, A.G., I. Barriga-Sosa, T. Morato-Cartagena, C.M. Romero-Ramírez & J.L. Arredondo-Figueroa. 2008. Desarrollo ovárico y su relación con las concentraciones séricas de 17β-estradiol y 17α-hidroxi- 4-pregnen-3-ona en hembras de primera maduración de pez blanco, Chirostoma humboldtianum (Atheriniforme: Atherinopsideae). Vet. Mex. 39: 67-80. [ Links ]
Boero, F, J. Bouillon, C. Gravili, M.P. Miglietta, T. Parsons & S. Piraino. 2008. Gelatinous plankton: irregularities rule the world (sometimes). Mar. Ecol. Prog. Ser. 356: 299-310. [ Links ]
Cabrera-Peña, J., M. Protti-Quesada, M. Urriola-Hernández, O.Sáenz-Vargas & R. Alfaro-Hidalgo. 2001. Tallas y fecundidad de Juxtafabia muliniarum (Brachyura: Pinnotheridae) asociado con Saccostrea palmula (Bivalvia : Ostreidae), Costa Rica. Rev. Biol. Trop. 49: 889-894. [ Links ]
Calder, D. 1982. Life History of the Cannonball Jellyfish, Stomolophus meleagris L. Agassiz, 1860 (Scyphozoa, Rhizostomida). Biol. Bull. 162: 149-146. [ Links ]
Carvalho-Saucedo, L., F. García-Domínguez, C. Rodríguez-Jaramillo & J. López-Martínez. 2010. Variación lipídica en los ovocitos de la medusa Stomolophus meleagris (Scyphozoa: Rhizostomeae), durante el desarrollo gonádico, en la laguna Las Guásimas, Sonora, México. Rev. Biol. Trop. 58: 119-130. [ Links ]
Carvalho-Saucedo, L., J. López-Martínez, F. García-Domínguez, C. Rodríguez-Jaramillo & J. Padilla-Serrato. 2011. Biología reproductiva de la medusa bola de cañón Stomolophus meleagris L. Agassiz 1862, en la laguna Las Guásimas, Sonora, México. Hidrobiológica 21: 77-88. [ Links ]
Chiaverano, L., Mianzan, H. & F. Ramírez. 2004. Gonad development and somatic growth patterns of Olindias sambaquiensis (Limnomedusae, Olindiidae). Hydrobiologia 530-531: 373-381. [ Links ]
D’Onghia, G., M. Basanisi, A. Matarrese & F. Megli. 1999. Reproductive strategies in macrourid fish: seasonality or not? Mar. Ecol. Prog. Ser. 184: 189-196. [ Links ]
Eckelbarger, K.J. & R.L. Larson. 1988. Ovarian morphology and oogenesis in Aurelia aurita (Scyphozoa: Semaeostomae): ultra-structural evidence of heterosynthetic yolk formation in a primitive metazoan. Mar. Biol. 100: 103-115. [ Links ]
Eckelbarger, K.J. & R. Larson. 1992. Ultrastructure of the ovary and oogenesis in the jellyfish Linuche unguiculata and Stomolophus meleagris, with a review of ovarian structure in the Scyphozoa. Mar. Biol. 114: 633-643. [ Links ]
Galinou-Mitsoudi, S. & A.I. Sinis. 1994. Reproductive cycle and fecundity of the date mussel Lithophaga lithophaga (Bivalvia, Mytilidae). J. Mollus. Stud. 60(4): 371-385. [ Links ]
Gayanilo, F.C., P. Sparre & D. Pauly. 2005. Stock Assessment Tools (FISAT II) on line User’s Guide The Food and Agriculture Organization of the United Nations. Roma. [ Links ]
Gómez-Aguirre, S. 1991. Estudio faunístico de celenterados. An. Inst. Biol. Univ. Nac. Autón. México, Ser. Zool. 62: 1-10. [ Links ]
Holst, S., I. Sötje, H. Tiemann & G. Jarms. 2007. Life cycle of the rhizostome jellyfish Rhizostoma octopus (L.) (Scyphozoa, Rhizostomeae), with studies on cnidocysts and statoliths. Mar. Biol. 151: 1695-1710. [ Links ]
Huang, Y. 1988. Cannonball jellyfish (Stomolophus meleagris) as a food resource. J. Food Sci. 53: 341-343. [ Links ]
Humason, G.L. 1979. Animal Tissue Techniques. W.H. Freeman and Co., San Francisco, EEUU. [ Links ]
Hsieh, H.Y., F.M. Leong & J. Rudloe. 2001. Jellyfish as food. Hydrobiologia 451: 11-17. [ Links ]
Kang, S., K. Choi, A. Alexandrovich-Bulgakov, Y. Kim & S. Kim. 2003. Enzyme-linked immunosorbent assay (ELISA) used in quantification of reproductive output in the pacific oyster, Crassostrea gigas, in Korea. J. Exp. Mar. Biol. Ecol. 282: 1-21. [ Links ]
López-Martínez, J. & J. Álvarez-Tello. 2008. Medusa bola de cañón: recurso de exportación. Ciencia y Desarrollo 34: 8-15. [ Links ]
Lucas, C.H. & S. Lawes. 1998. Sexual reproduction of the scyphomedusa Aurelia aurita in relation to temperature and variable food supply. Mar. Biol. 131: 629-638. [ Links ]
Lucas, C.H. 2001. Reproduction and life history strategies of the common jellyfish, Aurelia aurita, in relation to its ambient environment. Hydrobiologia 451: 229-246. [ Links ]
Morandini, A.C. & F.L. Da Silveira. 2001. Sexual reproduction of Nausithoe aurea (Scyphozoa, Coronatae). Gametogenesis, eggs release, embryonic development, and gastrulation. Sci. Mar. 65: 139-149. [ Links ]
Murua, H., G. Kraus, F. Saborido-Rey, P.R. Witthames, A. Thorsen & S. Junquera. 2003. Procedures to Estimate Fecundity of Marine Fish Species in Relation to their Reproductive Strategy. J. Northw. Atl. Fish. Sci. 33: 33-54. [ Links ]
Ocaña-Luna, A. & S. Gómez-Aguirre. 1999. Stomolophus meleagris (Scyphozoa: Rhizostomae) en dos lagunas costeras de Oaxaca, México. An. Inst. Biol. Univ. Nac. Autón. México, Ser. Zool. 70: 71-77. [ Links ]
Ohtsu, K., M. Kawahara, I. Ikeda & S. Uye. 2007. Experimental induction of gonadal maturation and spawning in the giant jellyfish Nemopilema nomurai(Scyphozoa: Rhizostomeae). Mar. Biol. 152: 667-676. [ Links ]
Olney, J.E. & R.S. McBride. 2003. Intraspecific variation in batch fecundity of American shad: revisiting the paradigm of reciprocal latitudinal trends in reproductive trait. Am. Fish Soc. Symp. 35: 185-192. [ Links ]
Omori, M. & E. Nakano. 2001. Jellyfish fisheries in Southeast Asia. Hydrobiologia 451: 19-26. [ Links ]
Padilla, E.D., V. Vega-Guillén, E. Tabuchi-Matsumoto, G. Vela-Prado & O. GonzalesReynoso. 2001. La metalografía cuantitativa en la investigación de aleaciones ferrosas y no ferrosas. Rev. Inst. Invest. Fac. Minas Metal Cienc. Geogr. 4: 18-23. [ Links ]
Ramos-Puebla, A., A. Hernandez-Samano, R. García-Barrientos & I. Guerrero-Legarreta. 2009. Jellyfish (Stomolophus meleagris) Tentacles Proteins and their Proteolysis Endogenous. World Academy of Science, Engineering and Technology, Paris, Francia. [ Links ]
Segura-Puertas, L., E. Suárez-Morales & L. Celis. 2003. A checklist of the Medusae (Hydrozoa, Scyphozoa and Cubozoa) of Mexico. Zootaxa 15: 1-15. [ Links ] Sokal, R. & J. Rohlf. 1981. Biometry. Freeman and Com- pany. San Francisco. [ Links ]
Tunberg, B.G. & A.S. Reed. 2004. Mass occurrence of the jellyfish Stomolophus meleagris and an associated spider crab Libinia dubia, Eastern Florida. Florida Scientist 67: 94-104. [ Links ]
Velázquez-Abunader, J.I., M. Villalejo-Fuerte & A. Tripp-Quezada. 2010. Fecundidad y proporción de sexos de Panulirus inflatus en la costa occidental del Golfo de California, México. Rev. Biol. Mar. Oceanogr. 45: 71-76. [ Links ]
Villalejo-Fuerte, M. 1995. Fecundidad de Argopecten circularis (Sowerby, 1835) (Bivalvia: Pectinidae) de Bahía Concepción, Baja California Sur, México. An. Inst. Invest. Mar. Punta Betín 24: 185-189. [ Links ]
Widersten, B. 1965. Genital organs and fertilization in some Scyphozoa. Zool. Bidrag. (Uppsala) 37: 45-58. [ Links ] ]]>
*Correspondencia: Liliana Carvalho Saucedo: Centro de Investigaciones Biológicas del Noroeste (CIBNOR), Mar Bermejo 195, Col. Playa Palo de Santa Rita, La Paz, B.C.S. 23090, México. Centro Interdisciplinario de Ciencias Marinas, Av. Instituto Politécnico Nacional s/n, Col. Playa Palo de Santa Rita, La Paz, B.C.S. 23096, México; carvalholiliana@ymail. Juana López Martínez: Centro de Investigaciones Biológicas del Noroeste (CIBNOR), Mar Bermejo 195, Col. Playa Palo de Santa Rita, La Paz, B.C.S. 23090, México; jlopez04@cibnor.mx Federico García Domínguez: Centro Interdisciplinario de Ciencias Marinas, Av. Instituto Politécnico Nacional s/n, Col. Playa Palo de Santa Rita, La Paz, B.C.S. 23096, México; fdoming@ipn.mx 1. Centro Interdisciplinario de Ciencias Marinas, Av. Instituto Politécnico Nacional s/n, Col. Playa Palo de Santa Rita, La Paz, B.C.S. 23096, México; carvalholiliana@ymail.com, fdoming@ipn.mx 2. Centro de Investigaciones Biológicas del Noroeste (CIBNOR), Mar Bermejo 195, Col. Playa Palo de Santa Rita, La Paz, B.C.S. 23090, México; jlopez04@cibnor.mx