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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Variabilidad genética de Brycon henni (Characiformes: Characidae) en la cuenca media de los ríos Nare y Guatapé, sistema Río Magdalena, Colombia]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="es"><p><![CDATA[Brycon henni es una especie nativa de la cuenca del río Magdalena, Colombia, donde es fuertemente explotada, por lo cual en este trabajo se estudió la variabilidad genética y estructura poblacional en individuos provenientes de la cuenca media de los ríos Nare y Guatapé, Antioquia. Se recolectaron 195 ejemplares y se les extrajo ADN genómico total del tejido muscular y/o sanguíneo. Se evaluaron 14 cebadores para la técnica RAPD (Random Amplifyed Polimorphic DNA), siendo cuatro de ellos polimórficos, los cuales generaron 66 fragmentos diferentes (63% polimorfismo). Por medio de un análisis de varianza molecular (AMOVA), se determinó la estructuración poblacional para todos los sitios evaluados y la cuenca del río Nare ( &#934;ST =0.297 y &#934;ST =0.163, respectivamente). Las distancias genéticas de Nei mostraron que todas las poblaciones diferían entre sí y que la mayor diferenciación genética se dio para las poblaciones del río Guatapé y la quebrada El Cardal. Un test de Mantel mostró correlación entre las distancias genéticas y geográficas (ambas cuencas, r=0.431; cuenca del río Nare, r=0.377). Esto sugiere aislamiento por distancia y separación de grupos genéticos producidos por los embalses sobre los ríos Nare y Guatapé, lo cual puede tener implicaciones relevantes en la conservación de la variabilidad genética de las poblaciones naturales de esta especie en el oriente antioqueño.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[ <p align="center"><b><font face="Verdana" size="4">Variabilidad gen&eacute;tica de </font></b><font face="Verdana" size="4"><i>Brycon henni </i><b>(Characiformes: Characidae) en la cuenca media de los r&iacute;os Nare y Guatap&eacute;, sistema R&iacute;o Magdalena, Colombia</b></font></p>     <p style="font-weight: bold;"><font face="Verdana" size="2">Julio C&eacute;sar Hurtado-Alarc&oacute;n<a href="#autor1"><sup>1</sup></a>, N&eacute;stor J. Mancera-Rodr&iacute;guez<a href="#autor2"><sup>2</sup></a> &amp; Clara I. Saldamando-Benjumea<a href="#autor3"><sup>3</sup></a></font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2"><a name="autor1"></a>1. Departamento de Ciencias Forestales, Universidad Nacional de Colombia, Calle 59A No 63-20, Bloque 11 Oficina 213, Medell&iacute;n, Colombia. Fax: (54) (4) 4309080; <a href="mailto:jchurtad@unal.edu.co">jchurtad@unal.edu.co</a>    <br> <a name="autor2"></a>2. Postgrado en Bosques y Conservaci&oacute;n Ambiental, Universidad Nacional de Colombia, Sede Medell&iacute;n, Colombia; <a  href="mailto:njmancer@unal.edu.co">njmancer@unal.edu.co</a>    <br> <a name="autor3"></a>3. Escuela de Biociencias, Universidad Nacional de Colombia, Sede Medell&iacute;n, Colombia; </font><font face="Verdana" size="2"><a  href="mailto:cisaldam@unal.edu.co">cisaldam@unal.edu.co</a>    <br> </font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2"><a  href="#correspondencia">Direcci&oacute;n para correspondencia</a>    <br> </font></p> <font face="Verdana" size="2"> </font><b><font face="Verdana" size="3"></font></b> <hr style="width: 100%; height: 2px;"><b><font face="Verdana" size="3">     <p>Abstract</p> </font><font face="Verdana" size="2"> </font></b>     <p style="text-align: justify;"><b><font face="Verdana" size="2">Genetic variability of </font></b><font face="Verdana" size="2"><i>Brycon henni </i><b>(Characiformes: Characidae) in the middle basin of Nare and Guatap&eacute; rivers, Magdalena River system, Colombia. </b><i>Brycon henni </i>is a native species in Magdalena&acute;s River basin, and because of its cultural and economic importance, is strongly overexploited. This study aimed to describe the genetic variability and population structure of this species from Nare and Guatap&eacute; rivers basins. A total of 195 individuals were collected and DNA extractions were obtained from muscle and blood tissue. Fourteen primers were evaluated with the RAPD technique, being four of them polymorphic, and produced 66 different fragments (63% polymorphism). Besides, using the molecular variance (AMOVA) analysis, the population structure was described for all sites (</font> &#934;<sub><i><font face="Verdana" size="2">ST</font></i></sub><font  face="Verdana" size="2">=0.297,&nbsp;</font> &#934;<sub><i><font face="Verdana" size="2">ST</font></i></sub><font  face="Verdana" size="2">=0.163; Nare and Guatap&eacute; river basins, respectively), and suggested the importance of the migratory behaviour of the species in the genetic differentiation. Genetic distances among sampled sites showed that most of the genetic differentiation occurred between sites Guatap&eacute; and El Cardal with respect to the others. A Mantel Test demonstrated a correlation between genetic and geographic distances (r=0.431 both of the basins evaluated; r=0.377, Nare river middle basin), and suggested isolation by distance. The outcomes obtained in this study have valuable implications in species conservation and the genetic variability of natural populations of <i>B. henni</i>, and should be complemented with morphological analyses. Rev. Biol. Trop. 59 (1): 269-282. Epub 2011 March 01.</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<div></div>     <p style="text-align: justify;"><font face="Verdana" size="2"><b>Key words: </b>Neotropical fish<i>, </i>population structure, RAPD, Characid conservation, Magdalena River.</font></p> <b><font face="Verdana" size="3">     <p>Resumen</p> </font></b><font face="Verdana" size="2"> </font>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2"><i>Brycon henni </i>es una especie nativa de la cuenca del r&iacute;o Magdalena, Colombia, donde es fuertemente explotada, por lo cual en este trabajo se estudi&oacute; la variabilidad gen&eacute;tica y estructura poblacional en individuos provenientes de la cuenca media de los r&iacute;os Nare y Guatap&eacute;, Antioquia. Se recolectaron 195 ejemplares y se les extrajo ADN gen&oacute;mico total del tejido muscular y/o sangu&iacute;neo. Se evaluaron 14 cebadores para la t&eacute;cnica RAPD (<i>Random Amplifyed Polimorphic DNA</i>), siendo cuatro de ellos polim&oacute;rficos, los cuales generaron 66 fragmentos diferentes (63% polimorfismo). Por medio de un an&aacute;lisis de varianza molecular (AMOVA), se determin&oacute; la estructuraci&oacute;n poblacional para todos los sitios evaluados y la cuenca del r&iacute;o Nare (</font> &#934;<font face="Verdana" size="2"><i><sub>ST</sub> </i></font><font  face="Verdana" size="2">=0.297 y </font> &#934;<i><font face="Verdana" size="2"><sub>ST</sub> </font></i><font  face="Verdana" size="2">=0.163, respectivamente). Las distancias gen&eacute;ticas de Nei mostraron que todas las poblaciones difer&iacute;an entre s&iacute; y que la mayor diferenciaci&oacute;n gen&eacute;tica se dio para las poblaciones del r&iacute;o Guatap&eacute; y la quebrada El Cardal. Un test de Mantel mostr&oacute; correlaci&oacute;n entre las distancias gen&eacute;ticas y geogr&aacute;ficas (ambas cuencas, r=0.431; cuenca del r&iacute;o Nare, r=0.377). Esto sugiere aislamiento por distancia y separaci&oacute;n de grupos gen&eacute;ticos producidos por los embalses sobre los r&iacute;os Nare y Guatap&eacute;, lo cual puede tener implicaciones relevantes en la conservaci&oacute;n de la variabilidad gen&eacute;tica de las poblaciones naturales de esta especie en el oriente antioque&ntilde;o.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2"><b>Palabras clave: </b>pez Neotropical, estructura poblacional, RAPD, conservaci&oacute;n de Car&aacute;cidos, r&iacute;o Magdalena.</font></p> <hr style="width: 100%; height: 2px;">     <p style="text-align: justify;"><font face="Verdana" size="2">En Colombia, los r&iacute;os andinos est&aacute;n sometidos a problem&aacute;ticas asociadas con la alteraci&oacute;n de ecosistemas por fragmentaci&oacute;n y p&eacute;rdida de h&aacute;bitat, alteraci&oacute;n en las din&aacute;micas de regulaci&oacute;n h&iacute;drica, p&eacute;rdida de la cobertura vegetal de sus laderas, presi&oacute;n sobre recursos hidrobiol&oacute;gicos, contaminaci&oacute;n, entre otros problemas, lo cual conlleva a una alta p&eacute;rdida de biodiversidad (Mojica 1999, Mojica <i>et al</i>. 2002). El pa&iacute;s posee un enorme potencial en recurso &iacute;ctico, debido a que se han estimado en m&aacute;s de 1 400 las especies de peces de agua dulce solo a partir de informaci&oacute;n secundaria y de ejemplares de museo, lo que da cuenta de la alta diversidad de la ictiofauna nativa (Maldonado-Ocampo <i>et al. </i>2008).</font></p>     <div style="text-align: justify;"><font face="Verdana" size="2"><i> </i></font></div>     <p style="text-align: justify;"><font face="Verdana" size="2"><i>Brycon henni</i>, conocida popularmente como sabaleta, es una especie nativa con una amplia distribuci&oacute;n en Colombia, con alta importancia para la seguridad alimentaria de los pobladores ribere&ntilde;os. Adem&aacute;s es una alternativa promisoria para realizar reintroducciones como opci&oacute;n para la conservaci&oacute;n de la especie y el desarrollo de pesca deportiva (Montoya <i>et al. </i>2006). <i>B. henni </i>no aparece en ninguna de las categor&iacute;as de riesgo propuestas por el libro rojo de peces dulceacu&iacute;colas de Colombia (Mojica <i>et al</i>. 2002), ni en la lista roja de especies amenazadas de la Uni&oacute;n Internacional para la Conservaci&oacute;n de la Naturaleza (UICN 2003). Sin embargo, su sobreexplotaci&oacute;n podr&iacute;a conllevar a la p&eacute;rdida de su variabilidad gen&eacute;tica.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">Las modificaciones de las condiciones ambientales en sistemas l&oacute;ticos pueden reducir las poblaciones de peces. En particular, la construcci&oacute;n de presas puede producir serios impactos en sus comunidades, debido a que perturba o bloquea sus migraciones (Morita &amp; Yamamoto 2002; Katano <i>et al. </i>2003, 2006). Tales modificaciones ocasionadas por la construcci&oacute;n de embalses (Ju&aacute;rez &amp; Varsi 1992), como ocurre en los r&iacute;os Nare y Guatap&eacute; (oriente del Departamento de Antioquia, Colombia), podr&iacute;an originar impactos sobre las poblaciones de sabaleta presentes en este r&iacute;o. Esta especie es considerada un nadador de potencia, con preferencia por zonas de r&iacute;os con corrientes fuertes y turbulentas (Maldonado-Ocampo <i>et al. </i>2005). No obstante, dado que hay informaci&oacute;n relacionada con migraci&oacute;n de la sabaleta a cortas distancias dentro de los r&iacute;os peque&ntilde;os y riachuelos o quebradas (Perdomo 1978, Jim&eacute;nez <i>et al</i>. 1998), este comportamiento podr&iacute;a ser una causa adicional que genere estructuraci&oacute;n gen&eacute;tica de sus poblaciones. </font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">Por ello, el prop&oacute;sito de este trabajo es utilizar marcadores moleculares altamente polim&oacute;rficos para realizar una evaluaci&oacute;n gen&eacute;tico-poblacional de la sabaleta presente en el oriente antioque&ntilde;o y determinar si existe una relaci&oacute;n del efecto de los embalses de las cuencas medias de los r&iacute;os Nare y Guatap&eacute; sobre la variabilidad gen&eacute;tica de esta especie. As&iacute; mismo, se busca determinar si el comportamiento migratorio parcial de &eacute;sta especie es una de las causas principales de su diferenciaci&oacute;n. Se utilizaron marcadores RAPD&acute;s (<i>Random Amplifyed Polimorphic DNA </i>&#8211; Polimorfismos de ADN Amplificados Aleatoriamente) (Williams <i>et al. </i>1990), puesto que han sido previamente usados con &eacute;xito en varias especies de peces del g&eacute;nero <i>Brycon </i>- (<i>B. cephalus, </i>Wasko <i>et al. </i>2004; <i>B. henni, </i>Pineda <i>et al. </i>2004, 2007; <i>B. orbignyanus</i>, Lopera-Barrero <i>et al. </i>2006, 2008), as&iacute; como en otras especies de peces (Pineda <i>et al. </i>2004, Povh <i>et al</i>. 2005, Vieira <i>et al. </i>2005) y de vertebrados (Soto-Marambio 2003). Este marcador molecular es una herramienta &uacute;til para evaluar polimorfismo gen&eacute;tico en las poblaciones estudiadas y obtener informaci&oacute;n sobre su diversidad gen&eacute;tica, sin tener un conocimiento previo de la gen&eacute;tica de la especie en cuesti&oacute;n (Barman <i>et al. </i>2002, Barfai <i>et al</i>. 2003), como lo exigen marcadores moleculares como los microsat&eacute;lites y RFLP&#8217;s (Hartl &amp; Clark 1997, Kang <i>et al</i>. 2006, Moreira <i>et al. </i>2007). Este trabajo puede ser de utilidad como una medida inicial de evaluaci&oacute;n gen&eacute;tica de esta especie en el oriente antioque&ntilde;o, con relaci&oacute;n a los planes de conservaci&oacute;n y manejo de la misma.</font></p> <b><font face="Verdana" size="3">     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify">Materiales y m&eacute;todos</p> </font></b><font face="Verdana" size="2"> </font>     <p style="text-align: justify;"><font face="Verdana" size="2"><b>&Aacute;rea de estudio y colecci&oacute;n de muestras: </b>Las colecciones de peces se realizaron entre octubre de 2007 y mayo de 2008 en diferentes sectores de las cuencas medias de los r&iacute;os Nare y Guatap&eacute;, en Antioquia, Colombia. Los sitios de muestreo se encuentran interrumpidos por los embalses Pe&ntilde;ol-Guatap&eacute; (quebradas La Compa&ntilde;&iacute;a, Puente Tierra, La Magdalena y Santa Gertrudis), Jaguas-San Lorenzo (quebradas El Nusito y San Lorenzo, y r&iacute;o Nare) y Playas (r&iacute;o Guatap&eacute; y quebrada El Cardal) (<a href="#cuadro1">Cuadro 1</a>). Una de las estaciones de muestreo (Aguas arriba embalse Pe&ntilde;ol-Guatap&eacute;), estuvo conformada por tres sitios diferentes, debido a que son muy cercanos entre s&iacute; y drenan al mismo embalse (Pe&ntilde;ol-Guatap&eacute;), est&aacute;n localizados aproximadamente a 2 000msnm y fueron los sitios con menor n&uacute;mero de muestras (19 en total) (<a href="#cuadro1">Cuadro 1</a>). Los ejemplares se capturaron utilizando diferentes artes de pesca (el&eacute;ctrica, atarraya, nasa, se&ntilde;uelos) y de cada uno de ellos se colect&oacute; aprox. 1.0g de tejido de la regi&oacute;n anterior del m&uacute;sculo epiaxial y/o 0.5-1ml de sangre perif&eacute;rica obtenida mediante punci&oacute;n de la vena caudal. Los tejidos colectados se introdujeron en viales para microcentr&iacute;fuga (AMERICAN SCIENTIFIC, USA) de 2.0ml, los cuales conten&iacute;an soluci&oacute;n <i>buffer </i>de colecta (0.1M Tris, 0.1M EDTA, 0.01M NaCl y 0.5% p/v SDS) y se refrigeraron a 4&deg;C. Se transportaron a los Laboratorios de Ecolog&iacute;a Aplicada -LECA-, &Aacute;rea de Fauna Silvestre (Departamento de Ciencias Forestales), y de Biolog&iacute;a Molecular y Celular (Escuela de Biociencias), de la Universidad Nacional de Colombia Sede Medell&iacute;n. All&iacute; se almacenaron a -20&deg;C, antes de someterse a procesos de extracci&oacute;n de ADN.    <br> </font></p>     <p><font face="Verdana" size="2">    <br> </font></p>     <p style="text-align: center;"><font face="Verdana" size="2"><a  name="cuadro1"></a><img src="/img/revistas/rbt/v59n1/a23t1.gif"  title="" alt="" style="width: 565px; height: 434px;">    <br>     <br> </font></p> <font face="Verdana" size="2"><b> </b></font>     <p style="text-align: justify;"><font face="Verdana" size="2"><b>Extracciones de ADN gen&oacute;mico: </b>Para la extracci&oacute;n de ADN gen&oacute;mico total a partir de los tejidos de los ejemplares de sabaleta capturados (sangre y m&uacute;sculo), se utiliz&oacute; el m&eacute;todo de fenol:cloroformo:alcohol isoam&iacute;lico (Sambrook <i>et al</i>. 1989, Taggart <i>et al</i>. 1992), con algunas modificaciones. Se tomaron aproximadame</font><font face="Verdana" size="2">nte 0.3g de tejido, se maceraron y resuspendieron en 500<span  style="font-style: italic;">&#956;</span>l de soluci&#963;</font><font  face="Verdana" size="2">n de extracci&oacute;n STE (0,1M Tris, 0,01M NaCl, 0,5M EDTA) en viales nuevos y est&eacute;riles de 2.0ml. Se adicionaron 30<span style="font-style: italic;">&#956;</span></font><font face="Verdana"  size="2">l SDS 10% y 15<span style="font-style: italic;">&#956;</span>l de proteinasa K (FERMENTAS UAB, CANAD&#913;</font><font face="Verdana" size="2">) (20mg/ml) y se d</font><font  face="Verdana" size="2">ejaron incubando por 14-16 hr a una temperatura de 55&deg;C. Posteriormente, se adicionaron 400<span  style="font-style: italic;">&#956;</span>l de cloroformo:alcohol isoam&#957;</font><font face="Verdana" size="2">lico (24:1), se agitaron suavemente por dos minutos y se centrifugaron a 13 000rpm durante 15min. Se tom&oacute; el sobrenadante, se adicion</font><font  face="Verdana" size="2">aron 400<span style="font-style: italic;">&#956;</span>l de isopropanol fr&#957;</font><font face="Verdana" size="2">o, se homogeniz&oacute; suavemente y se centrifug&oacute; nuevamente a 13 000rpm por 15 min. Se descart&oacute; el sobrenadante y el tubo se resuspendi&oacute; con 100<span style="font-style: italic;">&#956;</span>l de agua ultrapura est&eacute;ril, se almacen&oacute; por 24 hr a 4&deg;C para la completa hidrataci&oacute;n y diluci&oacute;n de las extracciones, finalmente se adicionaron a cada muestra 2<span  style="font-style: italic;">&#956;</span>l de RNAsa A (FERMENTAS UAB, CANAD&Aacute;) y se incub&oacute; por 30 min a 37&deg;C. Por &uacute;ltimo el ADN se almacen&oacute; a 4&deg;C.</font></p>     <div style="text-align: justify;"></div>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p style="text-align: justify;"><font face="Verdana" size="2"><b>Evaluaci&oacute;n de la calidad y cantidad de ADN obtenido en las extracciones: </b>La cantidad y calidad del ADN extra&iacute;do se evalu&oacute; en geles de agarosa (0.8%) te&ntilde;idos con bromuro de etidio (EtBr), se verific&oacute; en transiluminador de luz U.V. y se cuantific&oacute; con ayuda de un espectrofot&oacute;metro (ThermoScientific, USA), para lo cual la concentraci&oacute;n del ADN gen&oacute;mico se determin&oacute; mediante un an&aacute;lisis de absorbancia a una longitud de onda de 260nm. </font></p> <font face="Verdana" size="2"><b> </b></font>     <p style="text-align: justify;"><font face="Verdana" size="2"><b>Estandarizaci&oacute;n del proceso de amplificaci&oacute;n de <i>loci </i>de RAPD (Polimorfismos de ADN Amplificados Aleatoriamente): </b>Inicialmente, se probaron 14 cebadores dec&aacute;meros para RAPD de las series OPBA, OPAN y OPE (OPERON TECHNOLOGIES, USA) (<a href="#cuadro2">Cuadro 2</a>), los cuales se sometieron a evaluaci&oacute;n para detectar como primera medida contaminaci&oacute;n de los mismos, seguido de la identificaci&oacute;n de los m&aacute;s polim&oacute;rficos al momento de efectuar las reacciones de amplificaci&oacute;n aleatoria de ADN mediante PCR (<i>Polymerase Chain Reaction</i>, Amplificaci&oacute;n en Cadena de la Polimerasa). Para obtener productos de amplificaci&oacute;n de secuencias RAPD (<i>Random Amplifyed Polimorphic DNA</i>), se tuvieron en cuenta diferentes condiciones, a partir de las recomendadas por Williams <i>et al</i>. 1990, Wasko <i>et al. </i>2004, Pineda <i>et al. </i>2004, 2007 y Lopera-Barrero <i>et al. </i>2008. Adem&aacute;s, se incluyeron variaciones a las condiciones mencionadas por los autores se&ntilde;alados, en las concentraciones usadas de cada reactivo y en los perfiles t&eacute;rmicos de amplificaci&oacute;n. Las reacciones de PCR se llevaron a cabo en un termociclador PT-100 (MJ RESEARCH, USA) en viales de 200</font><font  face="Verdana" size="2">&#956;</font><font face="Verdana" size="2">l, en cada uno de los cuales se adicion&oacute; la mezcla de reacci&oacute;n que conten&iacute;a 1&#956;l de ADN molde (30-60</font><font face="Verdana" size="2">&#951;</font><font  face="Verdana" size="2">g), 0.5U de <i>Taq </i>polimerasa (FERMENTAS UAB, CANAD&Aacute;), 0.2mM de una soluci&oacute;n de los cuatro deoxinucle&oacute;tidos trifosfatados (dNTPs; FERMENTAS UAB, CANAD&Aacute;), 2.0mM MgCl<sup>2</sup> (FERMENTAS UAB, CANAD&Aacute;), 10</font><font face="Verdana" size="2">&#961;</font><font  face="Verdana" size="2">mol de cebador (<i>primer</i>) (IDT, OHIO- USA) y 2.5</font><font style="font-style: italic;" face="Verdana"  size="2">&#956;</font><font face="Verdana" size="2">l de soluci&oacute;n <i>buffer </i>10X (200mM Tris-HCl pH 8.4, 500mM KCl y 1.5mM MgCl<sub>2</sub>) (FERMENTAS UAB, CANAD&Aacute;). El volumen final por reacci&oacute;n fue 25<span  style="font-style: italic;">&#956;</span>l. Se estandarizaron las concentraciones de ADN, de cloruro de magnesio y las temperaturas de hibridizaci&oacute;n de los cebadores. El perfil t&eacute;rmico para las reacciones de PCR incluy&oacute;: temperatura inicial de 94&deg;C durante cinco minutos, seguida de 35-40 ciclos de un minuto a 95&deg;C, entre 35-45s a una temperatura &oacute;ptima de alineamiento (36&deg;C) y un minuto a 72&deg;C. Por &uacute;ltimo, una extensi&oacute;n final de dos minutos a 72&deg;C. Los productos de amplificaci&oacute;n se almacenaron a -20&deg;C.    <br> </font></p>     <p><font face="Verdana" size="2">    <br> </font></p>     <p style="text-align: center;"><font face="Verdana" size="2"><a  name="cuadro2"></a><img src="/img/revistas/rbt/v59n1/a23t2.gif"  title="" alt="" style="width: 277px; height: 346px;">    <br>     <br> </font></p> <font face="Verdana" size="2"><b> </b></font>     <p style="text-align: justify;"><font face="Verdana" size="2"><b>Determinaci&oacute;n del tama&ntilde;o de los fragmentos obtenidos por PCR: </b>Los productos de amplificaci&oacute;n se cargaron en geles de agarosa (1.5%) en tamp&oacute;n TBE 1X (0.089M Tris Base, 0.089M &aacute;cido b&oacute;rico y 0.002 M EDTA) y se utiliz&oacute; una escalera de peso molecular, la cual contiene 14 bandas entre 100-3 000 pares de bases (GeneRuler&#8482; 100 bp Plus DNA Ladder, FERMENTAS CANADA INC.). Para su visualizaci&oacute;n, los geles se ti&ntilde;eron con bromuro de etidio (0.5&#956;g/ml) y se sometieron a electroforesis en c&aacute;maras horizontales (BIO-RAD, USA). Las condiciones de corrido fueron 80V y 400mA durante dos horas. Los geles se observaron sobre una pantalla de luz ultravioleta para confirmar la efectividad de la amplificaci&oacute;n. Posteriomente, los geles se fotografiaron en un equipo de captura de im&aacute;genes (BIODOC ANALYZE -BIOMETRA, GERMANY) y las im&aacute;genes se guardaron en formato JPG para el an&aacute;lisis de las bandas (fragmentos) obtenidas. Debido a los potenciales problemas de replicabilidad de la amplificaci&oacute;n relacionados con la t&eacute;cnica de RAPDs, aproximadamente el 25% de las muestras fueron amplificadas y corridas electrofor&eacute;ticamente por duplicado.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">La presencia (1) o ausencia (0) de fragmentos de tama&ntilde;os moleculares id&eacute;nticos obtenidos por la t&eacute;cnica de RAPDs, se us&oacute; para la construcci&oacute;n de una matriz de distancias gen&eacute;ticas de Nei (Nei 1978). Estas distancias fueron agrupadas con el algoritmo UPGMA (<i>Unweighted Pair Group Method with Arithmetic Mean</i>, M&eacute;todo No Ponderado de Apareamiento por Grupos con Media Aritm&eacute;tica), obtenido con el programa MEGA 4.0 (Kumar <i>et al. </i>2008). La variabilidad gen&eacute;tica se determin&oacute; por el porcentaje de loci (fragmentos) polim&oacute;rficos. El an&aacute;lisis de estructura poblacional se obtuvo mediante un an&aacute;lisis de varianza molecular (AMOVA),&nbsp;</font> &#934;<font face="Verdana" size="2"><sub><i>ST</i></sub>, descrito por Excoffier <i>et al. </i>(1992) y Michalakis &amp; Excoffier (1996). La diferenciaci&oacute;n gen&eacute;tica entre poblaciones se estableci&oacute; por medio de la definici&oacute;n propuesta por Wright (1965), en la cual valores entre 0.00-0.05; 0.05-0.15; 0.15-0.25 y &gt;0.25 indican peque&ntilde;a, moderada, alta y elevada diferenciaci&oacute;n gen&eacute;tica, respectivamente (Hartl &amp; Clark 1997). Adicionalmente, se llevaron a cabo an&aacute;lisis de distancia e identidad gen&eacute;tica insesgados, seg&uacute;n lo descrito por Nei (1978). Luego, se realiz&oacute; una prueba de Mantel con 999 permutaciones, para evaluar la posible correlaci&oacute;n entre las matrices de distancias gen&eacute;tica y geogr&aacute;fica. Mediante la prueba de Mantel, se pueden mostrar patrones de aislamiento por distancia (Wright 1943). La matriz de distancias gen&eacute;ticas, los an&aacute;lisis de distancias e identidades gen&eacute;ticas y la prueba de Mantel fueron realizados con el programa GenAlEx (Peakall &amp; Smouse 2006).</font></p> <b><font face="Verdana" size="3">     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify">Resultados</p> </font></b><font face="Verdana" size="2"> </font>     <p style="text-align: justify;"><font face="Verdana" size="2"><b>Extracci&oacute;n de ADN gen&oacute;mico total: </b>En la cuantificaci&oacute;n de ADN de todas las muestras, se encontr&oacute; que sus concentraciones eran adecuadas para realizar la amplificaci&oacute;n de marcadores RAPD, debido a que sus valores de absorbancia a 260nm oscilaron entre 0.012-0.212.</font></p>     <div style="text-align: justify;"><font face="Verdana" size="2"><b>     <p align="justify">Amplificaci&oacute;n aleatoria de Polimorfismos de ADN</p> </b></font> </div>     <p style="text-align: justify;"><font face="Verdana" size="2"><b>Variabilidad gen&eacute;tica: </b>195 ejemplares de <i>Brycon henni </i>fueron genotipificados mediante oligonucle&oacute;tidos para la t&eacute;cnica RAPD con el uso de cuatro secuencias de oligonucle&oacute;tidos (OPBA13, OPBA10, OPE07, OPAN17) escogidas de un total inicial de 14 secuencias cebadoras. Esta escogencia se bas&oacute; en la replicabilidad de los perfiles obtenidos y el &eacute;xito de amplificaci&oacute;n en todos los 195 individuos muestreados. Con estos marcadores, se obtuvo un total de 66 fragmentos de amplificaci&oacute;n reproducibles, con tama&ntilde;os entre 350 y 3 000pb (pares de bases), de los cuales 41 fragmentos (62.55 %) fueron polim&oacute;rficos. El menor n&uacute;mero de fragmentos polim&oacute;rficos lo aportaron los cebadores OPBA13 y OPBA10 (nueve cada uno) y el mayor n&uacute;mero de fragmentos polim&oacute;rficos se obtuvo con el cebador OPAN17 (12 fragmentos) (<a href="#cuadro3">Cuadro 3</a>). Los valores de variabilidad gen&eacute;tica arrojados por la amplificaci&oacute;n de las secuencias RAPD en los siete sitios de muestreo, se pueden observar en el <a href="#cuadro4">Cuadro 4</a>. Adicionalmente, entre el total de bandas amplificadas, solo se encontr&oacute; un alelo privado para los sitios de muestreo localizados aguas arriba del embalse Pe&ntilde;ol-Guatap&eacute; (estaci&oacute;n de muestreo Antes Pe&ntilde;ol). En la <a href="#fig1">Fig. 1</a> se puede observar uno de los geles de los amplificados obtenidos de secuencias RAPD en geles de agarosa de algunas de las muestras de <i>B. henni</i>, en los sitios aguas arriba Pe&ntilde;ol-Guatap&eacute; (1-19) y Santa Gertrudis (20-38). Se diferencian algunos patrones polim&oacute;rficos para los individuos 3, 4, 6, 7, 15, 27, 34, 36, 37, con el cebador OPAN17 (<a href="#fig1">Fig. 1</a>).    <br> </font></p>     <p>    <br> </p>     <p><font face="Verdana" size="2">    <br> </font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p style="text-align: center;"><font face="Verdana" size="2"><a  name="cuadro3"></a><img src="/img/revistas/rbt/v59n1/a23t3.gif"  title="" alt="" style="width: 562px; height: 200px;">    <br> </font></p>     <p style="text-align: center;"><font face="Verdana" size="2">    <br> </font></p>     <p style="text-align: center;"><font face="Verdana" size="2">    <br> </font></p>     <p style="text-align: center;"><font face="Verdana" size="2"><a  name="cuadro4"></a><img src="/img/revistas/rbt/v59n1/a23t4.gif"  title="" alt="" style="width: 561px; height: 259px;">    <br> </font></p>     <p style="text-align: center;"><font face="Verdana" size="2">    <br>     ]]></body>
<body><![CDATA[<br> </font></p>     <p style="text-align: center;"><font face="Verdana" size="2"><a  name="fig1"></a><img src="/img/revistas/rbt/v59n1/a23f1.jpg" title=""  alt="" style="width: 565px; height: 392px;">    <br>     <br> </font></p> <font face="Verdana" size="2"><b> </b></font>     <p style="text-align: justify;"><font face="Verdana" size="2"><b>Distribuci&oacute;n de la variabilidad gen&eacute;tica: </b>El an&aacute;lisis de varianza molecular (AMOVA) en las cuencas de los r&iacute;os Nare y Guatap&eacute; en conjunto, arroj&oacute; un valor de 30% de variabilidad gen&eacute;tica producida por las diferencias gen&eacute;ticas entre los sitios de muestreo. El 70% restante de esta variabilidad se debi&oacute; a diferencias dentro de los sitios de muestreo. Sin embargo, cuando se realiz&oacute; un AMOVA para los sitios de la cuenca del r&iacute;o Nare exclusivamente, se encontr&oacute; que solo el 16% de la variabilidad gen&eacute;tica se explica por diferencias entre los sitios de muestreo y que el resto (84%) de la variabilidad era explicado por diferencias dentro de sitios. Adem&aacute;s, los estimados de estructuraci&oacute;n gen&eacute;tica (</font> &#934;<sub><i><font face="Verdana" size="2">ST</font></i></sub><font  face="Verdana" size="2">) obtenidos en este an&aacute;lisis, mostraron que para los sitios de muestreo de las dos cuencas se present&oacute; diferenciaci&oacute;n gen&eacute;tica, debido a que el valor de <i>Phi </i></font><font face="Verdana" size="2">(</font>&#934;<font face="Verdana"  size="2">) obtenido fue de 0.297 (g.l.=194, p&lt;0.001). De acuerdo con Excoffier </font><i><font face="Verdana"  size="2">et al. </font></i><font face="Verdana" size="2">(1992), los valores de <i>Phi </i>se pueden interpretar como an&aacute;logos del &iacute;ndice de fijaci&oacute;n <i>F<sub>ST</sub> </i>descrito por Wright (1965), por lo que se puede inferir que el nivel de estructuraci&oacute;n gen&eacute;tica obtenido con estos marcadores RAPD es muy alto. Similarmente, al analizar solo las poblaciones de la cuenca del r&iacute;o Nare (estaciones 1-5) se hall&oacute; un valor </font>&#934;<i><font face="Verdana" size="2"><sub>ST</sub> </font></i><font  face="Verdana" size="2">de 0.163 (g.l.=133, p&lt;0.001). Este valor, con relaci&oacute;n a lo planteado por Excoffier <i>et al. </i>(1992), se sit&uacute;a en un rango medio-alto de estructuraci&oacute;n gen&eacute;tica (Hartl &amp; Clark 1997).</font></p>     <div style="text-align: justify;"></div>     <p style="text-align: justify;"><font face="Verdana" size="2"><b>Distancia gen&eacute;tica entre poblaciones: </b>En el <a href="#cuadro5">Cuadro 5</a> se encuentran las matrices de distancias gen&eacute;ticas de Nei (1978) (debajo de la diagonal) y de identidades gen&eacute;ticas (sobre la diagonal). En la comparaci&oacute;n por pares de poblaciones, cuando se evaluaron las dos cuencas muestreadas (r&iacute;os Nare y Guatap&eacute;) se encontr&oacute; que para la especie <i>B. henni</i>, la menor distancia gen&eacute;tica observada entre poblaciones fue de 0.032 (Quebrada San Lorenzo y r&iacute;o Nare) y la mayor distancia gen&eacute;tica fue de 0.211 (entre las quebradas Santa Gertrudis y El Cardal). As&iacute; mismo, en la matriz de distancias gen&eacute;ticas de Nei (1978), se pudo discriminar entre ejemplares provenientes de las dos subcuencas de donde se extrajeron (r&iacute;o Nare, poblaciones 1-5, <i>vs </i>r&iacute;o Guatap&eacute;, poblaciones 6-7). Adicionalmente, los datos de identidad gen&eacute;tica obtenidos con estos marcadores moleculares indican que las poblaciones de la subcuenca del r&iacute;o Nare son muy similares entre s&iacute;, produciendo valores entre 0.925-0.969. El valor obtenido de identidad gen&eacute;tica de Nei (1973) para las poblaciones del r&iacute;o Guatap&eacute; fue de 0.911, siendo inferior a los obtenidos para las poblaciones del r&iacute;o Nare. Al comparar los drenajes evaluados, se diferenciaron las poblaciones de <i>B. henni </i>de la cuenca media del r&iacute;o Guatap&eacute; (r&iacute;os Guatap&eacute; y quebrada El Cardal), con respecto a las poblaciones de la cuenca media del r&iacute;o Nare (quebradas La Magdalena, Santa Gertrudis, San Lorenzo y El Nusito; R&iacute;o Nare), debido a que compartieron distancias gen&eacute;ticas m&aacute;s similares entre s&iacute; (<a href="#fig2">Fig. 2</a>).    <br> </font></p>     <p><font face="Verdana" size="2">    <br> </font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><font face="Verdana" size="2">    <br> </font></p>     <div style="text-align: center;"><a name="cuadro5"></a><img  src="/img/revistas/rbt/v59n1/a23t5.gif" title="" alt=""  style="width: 568px; height: 261px;">    <br>     <br>     <br>     <br> <a name="fig2"></a><img src="/img/revistas/rbt/v59n1/a23f2.jpg" title=""  alt="" style="width: 569px; height: 343px;">    <br>     <br> </div> <font face="Verdana" size="2"><b> </b></font>     <p><font face="Verdana" size="2"><b>Test de Mantel: </b>Para todas las poblaciones evaluadas en los r&iacute;os Nare y Guatap&eacute;, as&iacute; como para la cuenca del r&iacute;o Nare, se encontr&oacute; una correlaci&oacute;n positiva significativa entre la distancia gen&eacute;tica y la geogr&aacute;fica (coeficiente de correlaci&oacute;n <i>Rxy</i>=0.431, p&lt;0.001, ambas cuencas; <i>Rxy</i>=0.377, p&lt;0.001, cuenca del r&iacute;o Nare). Estos resultados sugieren que la especie estudiada presenta aislamiento por distancia (Wright 1943). </font></p> <b><font face="Verdana" size="3">     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify">Discusi&oacute;n</p> </font></b><font face="Verdana" size="2"> </font>     <p style="text-align: justify;"><font face="Verdana" size="2">La caracterizaci&oacute;n genot&iacute;pica de diferentes especies del g&eacute;nero <i>Brycon</i>, as&iacute; como la evaluaci&oacute;n de su estructura poblacional mediante marcadores moleculares RAPD, ha sido demostrada en <i>B. cephalus </i>(Wasko <i>et al. </i>2004), <i>B. henni </i>(Pineda <i>et al. </i>2004, 2007) y <i>B. orbignyanus </i>(Lopera-Barrero <i>et al. </i>2006, 2008), lo que refleja la validez y la vigencia de esta t&eacute;cnica para la realizaci&oacute;n de estudios sobre la variabilidad gen&eacute;tica de <i>B. henni </i>y el an&aacute;lisis de su estructura gen&eacute;tico-poblacional. </font></p>     <div style="text-align: justify;"></div>     <p style="text-align: justify;"><font face="Verdana" size="2">En el presente estudio se hall&oacute; un nivel de polimorfismo promedio cercano al 63% y para todas las poblaciones muestreadas entre 50-70%. Para el r&iacute;o Nare, en las poblaciones muestreadas antes y despu&eacute;s del embalse Pe&ntilde;ol-Guatap&eacute; as&iacute; como en la quebrada El Nusito y el r&iacute;o Nare, se encontraron valores entre 65-70%. En la quebrada San Lorenzo, se observaron valores de polimorfismo cercanos al 60%. Para el r&iacute;o Guatap&eacute;, los valores de polimorfismo obtenidos fueron inferiores (50-55%). Estos valores de variabilidad gen&eacute;tica en <i>B. henni </i>son altos dentro de cada poblaci&oacute;n y bajos entre poblaciones, lo que podr&iacute;a demostrar en parte la sobre-explotaci&oacute;n de la especie en los lugares muestreados. La p&eacute;rdida de variabilidad gen&eacute;tica siempre es esperada cuando no hay un buen manejo gen&eacute;tico en lotes de reproductores debido al cruzamiento de individuos emparentados, originados por endogamia (Kang <i>et al. </i>2006, Moreira <i>et al. </i>2007), causando reducci&oacute;n de la variabilidad gen&eacute;tica de una poblaci&oacute;n (Povh <i>et al. </i>2005). Sin embargo, un bajo tama&ntilde;o de una poblaci&oacute;n tambi&eacute;n es una de las causas principales de su baja variabilidad gen&eacute;tica (Hartl &amp; Clark 1997). En el caso de <i>B. henni</i>, uno de los sitios muestreados en este trabajo, tuvo una baja densidad poblacional (estaci&oacute;n Antes Pe&ntilde;ol -AP), lo cual puede ser considerado como una causa adicional del bajo polimorfismo encontrado en este estudio.</font></p>     <div style="text-align: justify;"></div>     <p style="text-align: justify;"><font face="Verdana" size="2">Por otro lado, las reducciones en el n&uacute;mero de <i>loci </i>polim&oacute;rficos presentes en peces pueden estar correlacionadas con un bajo n&uacute;mero de ejemplares en su h&aacute;bitat natural, y/o por ser poblaciones que se utilizan para establecer parentales para cr&iacute;a (Winkler <i>et al. </i>1999). Para la zona del oriente antioque&ntilde;o, no se cuenta con informaci&oacute;n de este tipo. Sin embargo, Pineda <i>et al. </i>(2004, 2007), mostraron que la diversidad gen&eacute;tica en poblaciones de <i>B. henni </i>en Antioquia es relativamente alta y similar para todos los sitios, expresada tanto en n&uacute;mero de fragmentos totales como en el n&uacute;mero de fragmentos &uacute;nicos (r&iacute;os Piedras y Humarada y estaci&oacute;n pisc&iacute;cola San Carlos, 201, 209, 190 fragmentos amplificados, respectivamente; 40, 20, 54 fragmentos &uacute;nicos, respectivamente). Los valores superiores de polimorfismo gen&eacute;tico en la estaci&oacute;n pisc&iacute;cola San Carlos, podr&iacute;an estar relacionados con potenciales cruzamientos entre ejemplares de <i>B. henni </i>de procedencia desconocida, lo cual podr&iacute;a ayudar a explicar los resultados obtenidos (Pineda <i>et al</i>. 2004, 2007). Para el establecimiento de la estaci&oacute;n pisc&iacute;cola San Carlos, la cual se localiza en el &aacute;rea de influencia del presente proyecto, se trasladaron ejemplares de <i>B. henni </i>de r&iacute;os con mayor abundancia poblacional hacia r&iacute;os con menos presencia de dichos peces, sin tener las precauciones necesarias para la identificaci&oacute;n correcta de los parentales en cautiverio (Pineda <i>et al</i>. 2007).</font></p>     <div style="text-align: justify;"></div>     <p style="text-align: justify;"><font face="Verdana" size="2">Este tipo de introducciones se deben realizar con cautela, ya que se pueden mezclar individuos con una constituci&oacute;n gen&eacute;tica diferente a la de las poblaciones receptoras, lo cual podr&iacute;a tener una implicaci&oacute;n compleja en el mantenimiento de <i>B. henni </i>debido a que la incorporaci&oacute;n de nuevos ejemplares no necesariamente implica una f&aacute;cil adaptabilidad de &eacute;stos a su nuevo h&aacute;bitat y a su vez se podr&iacute;an reproducir con las sabaletas nativas de cada localidad.</font></p>     <div style="text-align: justify;"></div>     <p style="text-align: justify;"><font face="Verdana" size="2">Adicionalmente, introducciones de nuevos ejemplares de peces de una localidad a otra pueden generar la propagaci&oacute;n de enfermedades. Un ejemplo de ello, es la introducci&oacute;n de los peces <i>Pseudorasbora parva</i>, <i>Pungtungia herzi</i>, <i>Pseudogobio esocinus</i>, <i>Acheilognathus intermedia</i>, <i>Odontobutis interrupta</i>, <i>Zacco temmincki</i>, <i>Zacco platypus</i>, y <i>Hemibarbus labeo </i>de China a Corea, lo cual a su vez provoc&oacute; la propagaci&oacute;n de clonorquiasis, producida por la bacteria par&aacute;sita <i>Clonorchis sinensis </i>en Corea, agente causal de una enfermedad que era inexistente en este pa&iacute;s (Kim <i>et al</i>. 2008).</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<div style="text-align: justify;"></div>     <p style="text-align: justify;"><font face="Verdana" size="2">Los valores de polimorfismo gen&eacute;tico hallados en este estudio son similares a los hallados por otros autores (Wasko <i>et al. </i>2004, Vieira <i>et al. </i>2005, Lopera-Barrero <i>et al. </i>2008), al utilizar esta misma clase de marcadores aleatorios en especies relacionadas y peces de aguas continentales, indicando que los marcadores RAPD utilizados en este trabajo reflejan un buen panorama de la variabilidad gen&eacute;tica de la sabaleta ubicada en la cuenca del r&iacute;o Nare. Wasko <i>et al. </i>(2004) encontraron valores de polimorfismo de 85% en cuatro poblaciones amaz&oacute;nicas de <i>B. cephalus</i>. Lopera-Barrero <i>et al. </i>(2008), hallaron niveles de polimorfismo entre 54-59% en <i>B. orbygnianus</i>. As&iacute; mismo, en Tilapia Nil&oacute;tica (<i>Oreochromis niloticus</i>), se hallaron niveles entre 47-80 % de polimorfismo. Para esta &uacute;ltima especie, la amplitud en los rangos obtenidos se relaciona con el hecho de que las poblaciones con menores valores de variabilidad gen&eacute;tica provienen de criaderos. Adem&aacute;s, en el anterior trabajo las tilapias tuvieron procesos de introducciones en sus linajes en los sitios de cr&iacute;a, ya que es una especie que presenta una buena adaptaci&oacute;n a los efectos del mejoramiento gen&eacute;tico. Los menores valores de polimorfismo gen&eacute;tico hallados en ese estudio est&aacute;n directamente relacionados con el tiempo de introducci&oacute;n de nuevos linajes (Vieira <i>et al. </i>2005).</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">Se encontr&oacute; una gran diferenciaci&oacute;n gen&eacute;tica entre las poblaciones muestreadas en ambas cuencas, lo cual podr&iacute;a demostrar el efecto de los embalses sobre la estructuraci&oacute;n de poblaciones de <i>B. henni </i>gen&eacute;ticamente diferenciadas en la zona de muestreo, y por lo tanto, el bajo flujo gen&eacute;tico entre ellas. Sin embargo, esta estructuraci&oacute;n tambi&eacute;n puede ser explicada por los movimientos de migraci&oacute;n que realiza esta especie (laterales cauce principal-quebradas-cauce principal y movimientos r&iacute;o arriba), los cuales pueden considerarse como movimientos de protecci&oacute;n y no de migraci&oacute;n reproductiva (Perdomo 1978, Jim&eacute;nez <i>et al</i>. 1998). Estos movimientos podr&iacute;an ser el efecto de estructuraci&oacute;n m&aacute;s v&aacute;lido para esta especie respecto al efecto de separaci&oacute;n geogr&aacute;fica generada por los embalses, debido a que &eacute;stos se construyeron hacia el a&ntilde;o de 1971 (Ju&aacute;rez &amp; Varsi 1992). Este es un tiempo relativamente corto para producir estructuraci&oacute;n gen&eacute;tica en la sabaleta del oriente antioque&ntilde;o, <i>B. henni, </i>debido a que su ciclo de vida es relativamente largo (tiempo generacional 1.2-2.3 a&ntilde;os) (Builes &amp; Ur&aacute;n 1974, Perdomo 1978), como para que los embalses act&uacute;en como una barrera geogr&aacute;fica que genere divergencia gen&eacute;tica en sus poblaciones.</font></p>     <p style="text-align: justify;"><font face="Verdana" size="2">Adicionalmente, es evidente la diferencia existente entre las dos cuencas muestreadas, con relaci&oacute;n a los valores obtenidos de distancias gen&eacute;ticas, debido a que los datos muestran bajos valores entre las poblaciones El Nusito, San Lorenzo y R&iacute;o Nare, de la cuenca del r&iacute;o Nare (0.054-0.077), as&iacute; como altos niveles de distancia gen&eacute;tica en la cuenca del r&iacute;o Guatap&eacute; (poblaciones R&iacute;o Guatap&eacute; y El Cardal, 0.144-0.210 respectivamente). La explicaci&oacute;n de este acontecimiento se puede deber a la ausencia de flujo gen&eacute;tico entre ambas cuencas. Aunque en el presente trabajo no se estim&oacute; de forma directa el n&uacute;mero de migrantes (<i>Nm</i>) entre las poblaciones evaluadas, se utiliz&oacute; un m&eacute;todo indirecto con el uso de la siguiente ecuaci&oacute;n: <i>F<sub>ST</sub> </i>= 1/(1+4<i>Nm</i>) (Wright 1931). A partir de esta f&oacute;rmula, se puede tomar como an&aacute;logo al valor <i>F<sub>ST</sub> </i>el valor obtenido en los c&aacute;lculos de estructuraci&oacute;n gen&eacute;tica (</font>&#934;<i><font  face="Verdana" size="2"><sub>ST</sub> </font></i><font face="Verdana"  size="2">para las poblaciones de las dos cuencas muestreadas=0.297;</font>&#934;<i><font face="Verdana" size="2"><sub>ST</sub> </font></i><font face="Verdana" size="2">cuenca del r&iacute;o Nare=0.163). Al despejar de la ecuaci&oacute;n el n&uacute;mero de migrantes, arroj&oacute; un valor bajo para todas las poblaciones en las dos cuencas bajo estudio (r&iacute;os Nare y Guatap&eacute;, <i>Nm</i>=0.59), as&iacute; como para el caso de la cuenca del r&iacute;o Nare (<i>Nm</i>=1.0), lo cual corrobora los resultados obtenidos de estructuraci&oacute;n gen&eacute;tica, y demuestra que hay un bajo flujo gen&eacute;tico entre las poblaciones de este estudio. Sin embargo, es importante tener en cuenta que, para confirmar estos resultados, es necesario evaluar otros marcadores moleculares (<i>i.e. </i>regiones de ADN microsat&eacute;lite). Estos marcadores pueden demostrar los posibles efectos de la endogamia y podr&iacute;an ayudar a determinar cuellos de botella, efecto Wahlund, deriva gen&eacute;tica, entre otros (Frankham <i>et al. </i>2002). Adicional a esto, un an&aacute;lisis de dispersi&oacute;n directa podr&iacute;a ser utilizado en esta especie mediante marca-recaptura, lo cual podr&iacute;a proveer elementos para un uso m&aacute;s adecuado de estimados de estructura gen&eacute;tica en la b&uacute;squeda de indicadores de flujo gen&eacute;tico (Whitlock &amp; McCauley 1999).</font></p>     <div style="text-align: justify;"></div>     <p style="text-align: justify;"><font face="Verdana" size="2">El test de Mantel estima la correlaci&oacute;n existente entre dos matrices de distancias, t&iacute;picamente una matriz de distancias gen&eacute;ticas y una matriz de distancias geogr&aacute;ficas, con un test de significancia por permutaci&oacute;n. De acuerdo con los resultados obtenidos al correlacionar las matrices triangulares de distancias gen&eacute;tica y geogr&aacute;fica, la significancia de este test fue alta, demostrado por la correlaci&oacute;n positiva hallada (coeficiente de correlaci&oacute;n <i>Rxy</i>=0.431, p&lt;0.001, cuencas medias de los r&iacute;os Nare y Guatap&eacute;; <i>Rxy</i>=0.377, p&lt;0.001, cuenca del r&iacute;o Nare), sugiriendo procesos de aislamiento por distancia en las poblaciones evaluadas (Peakall <i>et al. </i>2003). En el modelo de aislamiento por distancia de Wright (1943), la poblaci&oacute;n no est&aacute; subdividida en subunidades donantes o receptoras de migrantes, ni es una unidad panm&iacute;ctica. Los cruzamientos al azar est&aacute;n limitados por la distancia, de modo que los individuos tendr&aacute;n una mayor probabilidad de aparearse con vecinos que con individuos m&aacute;s lejanos. De este modo, se pueden agrupar a los individuos en "vecindarios", &aacute;reas definidas por "individuos centrales" cuyos progenitores se pueden tratar como extra&iacute;dos al azar (Wright 1943) y por lo tanto, si se requiere realizar repoblamientos de esta especie, se deber&aacute; tener m&aacute;s en cuenta las poblaciones vecinas que las poblaciones distanciadas gen&eacute;ticamente, para evitar una contaminaci&oacute;n gen&eacute;tica de la sabaleta de las cuencas medias de los r&iacute;os Nare y Guatap&eacute; en el oriente antioque&ntilde;o.</font></p>     <div style="text-align: justify;"></div>     <p style="text-align: justify;"><font face="Verdana" size="2">El modelo de aislamiento por distancia asume que la discontinuidad en las poblaciones se produce por diversas causas. En este trabajo la discontinuidad en las poblaciones de <i>B. henni </i>se podr&iacute;a explicar por las barreras geogr&aacute;ficas entre los sitios muestreados, sus barreras bi&oacute;ticas, pendientes de r&iacute;os muy altas y migraciones a corta distancia que realiza la especie (Jim&eacute;nez <i>et al. </i>1998), siendo el comportamiento migratorio una de las causas m&aacute;s plausibles observadas en este trabajo. Se han realizado estudios de aislamiento por distancia en otras especies de peces. En Columbia Brit&aacute;nica (Canad&aacute;), se encontr&oacute; un fuerte aislamiento por distancia en poblaciones del Salm&oacute;n <i>Oncorhynchus tshawytscha</i>, en 22 localidades ubicadas entre Alaska y Columbia Brit&aacute;nica, al evaluarse 32 sistemas de aloenzimas. Se encontr&oacute; que la pendiente de la regresi&oacute;n fue -0.299 y r<sup>2</sup>=0.385; p&lt;0.001 (Guthrie &amp; Wilmot 2004). Otro estudio en el norte de Europa, el cual evalu&oacute; poblaciones de salm&oacute;n del Atl&aacute;ntico (<i>Salmo salar</i>), un an&aacute;lisis con aloenzimas y microsat&eacute;lites tambi&eacute;n demostr&oacute; un aislamiento por distancia entre las poblaciones b&aacute;lticas y del atl&aacute;ntico (r=0.477; p=0.001 (Tonteri <i>et al. </i>2005). En ambos casos, las barreras geogr&aacute;ficas fueron las causas del aislamiento por distancia. Tambi&eacute;n puede citarse el trabajo de Mulvey <i>et al</i>. (2002), quienes realizaron un test de Mantel de tres v&iacute;as usando distancia gen&eacute;tica, distancia geogr&aacute;fica y distancia de contaminantes entre pares de sitios. Este test se utiliz&oacute; para intentar correlacionar diferencias en contaminaci&oacute;n de sedimentos con PAH (<i>polycyclic aromatic hydrocarbons</i>; hidrocarburos polic&iacute;clicos arom&aacute;ticos), con la distancia gen&eacute;tica obtenida por marcadores isoenzim&aacute;ticos entre las poblaciones evaluadas del pez <i>Fundulus heteroclitus </i>en diferentes sitios del estuario del r&iacute;o Elizabeth (Virginia, USA). El test de Mantel indic&oacute; una correlaci&oacute;n positiva pero no significativa estad&iacute;sticamente (r=0.47, </font><!-- big --><font  style="font-family: times new roman;" face="Verdana" size="2"><!-- big -->&#945;<!-- /big --></font><!-- /big --><font  face="Verdana" size="2">=0.05), entre la diferencia en contaminaci&oacute;n de PAH en sedimentos y la distancia gen&eacute;tica entre poblaciones de nueve sitios evaluados. No obstante, coeficientes de correlaci&oacute;n muy bajos y no significativos estad&iacute;sticamente indicaron que no exist&iacute;a relaci&oacute;n entre la distancia gen&eacute;tica y geogr&aacute;fica en peces capturados a una escala geogr&aacute;fica inferior (Mulvey <i>et al</i>. 2002). </font></p>     <div style="text-align: justify;"></div>     <p style="text-align: justify;"><font face="Verdana" size="2">En otra investigaci&oacute;n, Bay <i>et al. </i>(2008), evaluaron la diversidad gen&eacute;tica y estructura gen&eacute;tica en la regi&oacute;n control I del ADN mitocondrial entre regiones y arrecifes en el pez arrecifal <i>Acanthochromis polyacanthus</i>, el cual tiene amplio rango de distribuci&oacute;n en la Gran Barrera de Coral de Australia. En este estudio se evaluaron mediante test de Mantel (1 000 permutaciones), correlaciones entre matrices de distancias gen&eacute;ticas y geogr&aacute;ficas de pares de poblaciones, utilizando para ello el programa GenAlEx 6 (Peakall &amp; Smouse 2006). Los resultados de an&aacute;lisis para el modelo de aislamiento por distancia de Wright (1943), indicaron que se hall&oacute; correlaci&oacute;n entre distancias gen&eacute;ticas y geogr&aacute;ficas solo para algunas de las &aacute;reas muestreadas (</font>&#934;<font face="Verdana" size="2"><i><sub>ST</sub> vs. </i>km: r=0.77, p=0.001). Sin embargo, esta correlaci&oacute;n permaneci&oacute; estad&iacute;sticamente significativa cuando el n&uacute;mero de arrecifes muestreados se redujo a seis (dos de cada una de las regiones evaluadas: norte, centro y sur), para obtener un n&uacute;mero de comparaciones similar al evaluado dentro de regiones (</font>&#934;<font  face="Verdana" size="2"><i><sub>ST</sub> vs. </i>km: r=0.91, p=0.02). En contraste, las distancias gen&eacute;ticas y geogr&aacute;ficas no se correlacionaron dentro de regiones (p&gt;0.05 para todos los casos) (Bay <i>et al. </i>2008). En el caso de las poblaciones de <i>B. henni </i>analizadas en el presente trabajo, los datos sugieren que se presenta aislamiento por distancia, lo cual podr&iacute;a ser explicado en parte por su comportamiento migratorio en cortas distancias (Builes &amp; Ur&aacute;n 1974, Perdomo 1978, Jim&eacute;nez <i>et al. </i>1998).</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<div style="text-align: justify;"></div>     <p style="text-align: justify;"><font face="Verdana" size="2">En conclusi&oacute;n, en este trabajo los marcadores moleculares RAPD fueron &uacute;tiles en la determinaci&oacute;n de la variabilidad gen&eacute;tica de <i>B. henni</i>, hall&aacute;ndose resultados de polimorfismo gen&eacute;tico similares a trabajos previos realizados en esta especie. La estructuraci&oacute;n gen&eacute;tica y el aislamiento por distancia de <i>B. henni</i>, podr&iacute;an explicarse por el comportamiento migratorio del pez en cortas distancias y por agrupaciones (<i>clusters</i>) gen&eacute;ticas en los dendrogramas de distancias que separaron las cuencas de los r&iacute;os Nar&eacute; y Guatap&eacute;. Esta evaluaci&oacute;n gen&eacute;tica inicial es relevante para el conocimiento de la biolog&iacute;a de <i>B. henni </i>en el oriente antioque&ntilde;o, ya que aporta informaci&oacute;n &uacute;til para los planes de conservaci&oacute;n y manejo de esta especie. Es recomendable que en futuras investigaciones con <i>B. henni </i>se utilicen marcadores moleculares codominantes, que puedan determinar niveles de endogamia y de heterocigosidades de sus poblaciones, entre otros an&aacute;lisis. As&iacute; mismo, se podr&iacute;an implementar estudios morfol&oacute;gicos y morfom&eacute;tricos de la especie, an&aacute;lisis de depredadores potenciales de la sabaleta y estudios de calidad del agua de los sitios analizados, entre otros, que puedan ser usados como complemento de los resultados obtenidos en esta investigaci&oacute;n. </font></p> <b><font face="Verdana" size="3">     <p align="justify">Agradecimientos</p> </font></b><font face="Verdana" size="2"> </font>     <div style="text-align: justify;"><font face="Verdana" size="2">     <p>A ISAGEN E.S.P., a la Corporaci&oacute;n Aut&oacute;noma Regional de los R&iacute;os Negro y Nare -CORNARE y a la Universidad Nacional de Colombia Sede Medell&iacute;n, por la financiaci&oacute;n y log&iacute;stica necesaria para llevar a cabo esta investigaci&oacute;n. As&iacute; mismo, a las Empresas P&uacute;blicas de Medell&iacute;n&#8211;EPM, por la log&iacute;stica brindada en el Campamento "La Ara&ntilde;a" de la Central Hidroel&eacute;ctrica Guatap&eacute;, en el municipio de San Rafael, Antioquia, Colombia.</p> </font></div> <font face="Verdana" size="2"></font><b><font face="Verdana" size="3"> </font></b> <hr style="width: 100%; height: 2px;"><b><font face="Verdana" size="3">     <p align="justify">Referencias</p> </font></b><font face="Verdana" size="2"> </font>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2">Barfai, R., S. Egedi, G.H. Yue, B. Kovacs, B. Urbanyi, G. Tamas, L. Horvath &amp; L. Orban. 2003. Genetic analysis of two commom carp broodstocks by RAPD and microsatellite markers. Aquaculture 219: 157-167.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1710349&pid=S0034-7744201100010002300001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p><font face="Verdana" size="2">Barman, H.K., A. Barat, B.M. Yadav, S. Banerjee, P.K. Meher, P.V. Reddy &amp; R.K. Jana. 2002. Genetic variation between four species of Indian major carps as revealed by random amplified polymorphic DNA assay. Aquaculture 202: 1-9.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1710351&pid=S0034-7744201100010002300002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2">Bay, L., J. Caley &amp; R. Crozier. 2008. Meta-population structure in a coral reef fish demonstrated by genetic data on patterns of migration, extinction and re-colonisation. BMC Evol. Biol. 8: 248-264.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1710353&pid=S0034-7744201100010002300003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2">Builes, J. &amp; A. Ur&aacute;n. 1974. Estudio del ciclo sexual de la Sabaleta <i>Brycon henni </i>Eigenmann: Su comportamiento y fecundaci&oacute;n artificial. Actual. Biol. 7: 2-12.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1710355&pid=S0034-7744201100010002300004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2">Excoffier, L., P.E. Smouse &amp; J.M. Quattro. 1992. Analysis of molecular variance inferred from metric distances among DNA haplotypes: application to human mitochondrial DNA restriction data. Genetics 131: 479-491.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1710357&pid=S0034-7744201100010002300005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2">Frankham, R., J. Ballou &amp; D. Briscoe. 2002. Introduction to conservation genetics. Cambridge, Cambridge, England.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1710359&pid=S0034-7744201100010002300006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><br> </font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2">Guthrie III, C.M. &amp; R. Wilmot. 2004. Genetic structure of wild chinook salmon Populations of Southeast Alaska and northern British Columbia. Environ. Biol. Fish. 69: 81-93.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1710361&pid=S0034-7744201100010002300007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2">Hartl, D.L. &amp; A.G. Clark. 1997. Principles of population genetics. Sinauer, Sunderland, Massachussets, EEUU.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1710363&pid=S0034-7744201100010002300008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2">Jim&eacute;nez, J.L., C. Rom&aacute;n-Valencia &amp; M. Cardona. 1998. Distribuci&oacute;n y constancia de las comunidades de peces en la quebrada San Pablo, cuenca del R&iacute;o La Paila, Alto Cauca, Colombia. Rev. Actual. Biol. 20: 21-27.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1710365&pid=S0034-7744201100010002300009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2">Ju&aacute;rez, J.R. &amp; E. Varsi. 1992. Avances en el manejo y aprovechamiento acu&iacute;cola de embalses en Am&eacute;rica Latina y el Caribe. Cap&iacute;tulo 3. Aprovechamiento Acu&iacute;cola de Embalses en Colombia. Proyecto Aquila II. FAO, Organizaci&oacute;n de las Naciones Unidas para la Agricultura y la Alimentaci&oacute;n, Roma, Italia. (Consultado: 28 marzo, 2009, <a  href="http://www.fao.org/docrep/field/003/ab488s/AB488S00.htm#TOC">http://www.fao.org/docrep/field/003/ab488s/AB488S00.htm#TOC</a>).    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1710367&pid=S0034-7744201100010002300010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2">Kang, J.H., J.K. Noh, J.H. Kim, J.H. Lee, H.C. Kim &amp; K.K. Kim. 2006. Genetic Relationship Between Broodstocks of Olive Flounder, <i>Paralichthys olivaceus </i>(Temminck &amp; Schlegel) Using Microsatellite Markers. Aquac. Res. 37: 701-707.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1710369&pid=S0034-7744201100010002300011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2">Katano, O., K. Hosoya, K. Iguchi, M. Yamaguchi, Y. Aonuma &amp; S. Kitano. 2003. Species diversity and abundance of freshwater fishes in irrigation ditches around rice fields. Environ. Biol. Fish. 66: 107-121.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1710371&pid=S0034-7744201100010002300012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p><font face="Verdana" size="2">Katano, O., T. Nakamura, S. Abe, S. Yamamoto &amp; Y. Baba. 2006. Comparison of fish communities between above- and below-dam sections of small streams; barrier effect to diadromous fishes. J. Fish Biol. 68: 767-782</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1710373&pid=S0034-7744201100010002300013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2">Kim, E.M., J.L. Kim, S.Y. Choi, J.W. Kim, S. Kim, M.H. Choi, Y.M. Bae, S.H. Lee &amp; S.T. Hong. 2008. Infection Status of Freshwater Fish with Metacercariae of <i>Clonorchis sinensis </i>in Korea. Korean J. Parasitol. 46: 247-251.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1710374&pid=S0034-7744201100010002300014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2">Kumar, S., J. Dudley, M. Nei, M. Tamura. 2008. MEGA: A biologist-centric software for evolutionary analysis of DNA and protein sequences. Brief. Bioinform. 9: 299-306.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1710376&pid=S0034-7744201100010002300015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2">Lopera-Barrero, N.M., R.P. Ribeiro, S.N. Sirol, J.A. Povh, P.C. Gomes, L. Vargas &amp; D.P. Streit Jr. 2006. Genetic diversity in piracanjuba populations (<i>Brycon orbignyanus</i>) with the RAPD (Random Amplified Polimorphic DNA) markers. J. Anim. Sci. 84: 170-170.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1710378&pid=S0034-7744201100010002300016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2">Lopera-Barrero, N., R. Ribeiro, S. Sirol, J. Povh, P. Gomes, L. Vargas &amp; C. Mangolin. 2008. Variabilidad gen&eacute;tica de lotes de <i>Brycon orbignyanus </i>utilizados en programas de repoblamiento: manejo y conservaci&oacute;n. Acta Biol. Col. 13: 107-118.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1710380&pid=S0034-7744201100010002300017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2">Maldonado-Ocampo, J.A., A. Ortega, J.S. Usma, G. Galvis, F.A. Villa, L. V&aacute;squez, S. Prada &amp; C. Ardila. 2005. Peces de los Andes de Colombia. Instituto de Investigaci&oacute;n de Recursos Biol&oacute;gicos Alexander von Humboldt, Bogot&aacute; D.C., Colombia.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1710382&pid=S0034-7744201100010002300018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2">Maldonado-Ocampo, J.A., R.P. Vari &amp; J.S. Usma. 2008. Checklist of the Freshwater Fishes of Colombia. Biota Col. 9: 143-237.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1710384&pid=S0034-7744201100010002300019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2">Michalakis, Y. &amp; L. Excoffier. 1996. A generic estimation of population subdivision using distances between alleles with special reference to microsatellite loci. Genetics 142: 1061-1064.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1710386&pid=S0034-7744201100010002300020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2">Mojica, J.I. 1999. Lista preliminar de las especies de peces dulceacu&iacute;colas de Colombia. <i>Rev. Acad. Col. Ciencias Ex</i>. Fis. <i>Nat. </i>23: 547-566.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1710388&pid=S0034-7744201100010002300021&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2">Mojica, J.I., C. Castellanos, J.S. Usma &amp; R. &Aacute;lvarez. 2002. Libro rojo de peces dulceacu&iacute;colas de Colombia. Serie Libros Rojos de Especies Amenazadas de Colombia. Instituto de Ciencias Naturales, Universidad Nacional de Colombia y Ministerio del Medio Ambiente, Bogot&aacute;, Colombia.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1710390&pid=S0034-7744201100010002300022&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2">Montoya, A., L. Carrillo &amp; M. Olivera. 2006. Algunos aspectos biol&oacute;gicos y del manejo en cautiverio de la sabaleta <i>Brycon henni </i>Eigenmann, 1913 (Pisces: Characidae). Rev. Col. Cienc. Pec. 19: 180-186.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1710392&pid=S0034-7744201100010002300023&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p><font face="Verdana" size="2">Moreira, A.A., A.W.S. Hilsdorf, J.V. Silva &amp; D.A. Souza. 2007. Variabilidade gen&eacute;tica de duas variedades de til&aacute;pia nil&oacute;tica por meio de marcadores microssat&eacute;lites. Pesqui. Agropecu. Bras. 42: 521-526.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1710394&pid=S0034-7744201100010002300024&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2">Morita, K. &amp; S. Yamamoto. 2002. Effects of habitat fragmentation by damming on the persistence of stream-dwelling charr populations. Conserv. Biol. 16: 1318-1323.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1710396&pid=S0034-7744201100010002300025&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2">Mulvey, M., M. Newman, W. Vogelbein &amp; M. Unger. 2002. Genetic structure of <i>Fundulus heteroclitus </i>from PAH-contaminated and neighboring sites in the Elizabeth and York Rivers. Aquat. Toxicol. 61: 195-209.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1710398&pid=S0034-7744201100010002300026&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2">Nei, M. 1973. Analysis of Gene Diversity in Subdivided Populations. P. Natl. Acad. Sci. USA. 70: 3321-3323.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1710400&pid=S0034-7744201100010002300027&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2">Nei, M. 1978. Estimation of average heterozygosity and genetic distance from a small number of individuals. Genetics 89: 583-590.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1710402&pid=S0034-7744201100010002300028&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2">Peakall, R., M. Ruibal &amp; D.B. Lindenmayer. 2003. Spatial autocorrelation analysis offers new insights into gene flow in the Australian bush rat, <i>Rattus fuscipes</i>. Evolution 57: 182-1195.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1710404&pid=S0034-7744201100010002300029&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2">Peakall, R. &amp; P.E. Smouse. 2006. GENALEX 6: genetic analysis in Excel. Population genetic software for teaching and research. Mol. Ecol. Notes 6: 288-295.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1710406&pid=S0034-7744201100010002300030&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> </font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2">Perdomo, J. 1978. La sabaleta (<i>Brycon henni</i>) observaciones bioecol&oacute;gicas y su importancia como especie de cultivo. Rev. Div. Pesq. 11: 1-46.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1710408&pid=S0034-7744201100010002300031&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2">Pineda, H., D. Pareja, M. Olivera &amp; J. Builes. 2004. Contribuci&oacute;n a la relaci&oacute;n taxon&oacute;mica entre cuatro especies de peces de la familia Characidae mediante el Polimorfismo de ADN Amplificado al Azar (RAPD). Rev. Col. Cienc. Pec. 17: 30-37.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1710410&pid=S0034-7744201100010002300032&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2">Pineda, H., L. Arboleda, A. Echeverry, S. Urcuqui, D. Pareja, M. Olivera &amp; J. Builes. 2007. Caracterizaci&oacute;n de la diversidad gen&eacute;tica en el pez <i>Brycon henni </i>(Characiformes: Characidae) en Colombia central por medio de marcadores RAPD. Rev. Biol. Trop. 55: 1025-1035.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1710412&pid=S0034-7744201100010002300033&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2">Povh, J.A., H.L.M. Moreira, R.P. Ribeiro, A.P. Prioli, L. Vargas &amp; D.V. Blanck. 2005. Estimativa da variabilidade gen&eacute;tica em til&aacute;pia do Nilo (<i>Oreochromis niloticus</i>) com a t&eacute;cnica de RAPD. Acta Sci. An. Sci. 27: 1-10.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1710414&pid=S0034-7744201100010002300034&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2">Sambrook, J., E.F. Fritsch &amp; T. Maniatis. 1989. Molecular cloning: a laboratory manual. Cold Spring Harbor Laboratory, Cold Spring Harbor, Nueva York, EEUU.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1710416&pid=S0034-7744201100010002300035&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2">Soto-Marambio, E.R. 2003. Variaci&oacute;n morfol&oacute;gica, variaci&oacute;n gen&eacute;tica y estructura poblacional en poblaciones alop&aacute;tricas de <i>Bufo spinulosus </i>(Anura: Bufonidae) en Chile. Tesis de Maestr&iacute;a, Universidad de Chile, Santiago de Chile, Chile. (Consultado: 13 septiembre, 2008, <a  href="http://www.cybertesis.cl/tesis/uchile/2003/soto_e/html/index-frames.html">http://www.cybertesis.cl/tesis/uchile/2003/soto_e/html/index-frames.html</a>).    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1710418&pid=S0034-7744201100010002300036&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2">U.I.C.N. 2003. Lista Roja de Especies en Peligro. Uni&oacute;n Internacional para la Conservaci&oacute;n de la Naturaleza, Gland, Suiza. (Consultado: 13 febrero 2009, <a href="http://www.redlist.org">http://www.redlist.org</a>).    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1710420&pid=S0034-7744201100010002300037&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2">Taggart, J.B., R.A. Hynes, P.A. Prodohl &amp; A. Ferguson. 1992. A simplified protocol for routine DNA isolation from salmonid fishes. J. Fish Biol. 40: 963-965.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1710422&pid=S0034-7744201100010002300038&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2">Tonteri, A., S. Titov, A. Veselov, A. Zubchenko, M.T. Kosikinen, D. Lesbarrer&eacute;res, S. Kaluzhin, I. Bakhmet, J. Lumme &amp; C.R. Primmer. 2005. Phylogeography of anadromous and non-anadromous Atlantic salmon (Salmo salar) from Northern Europe. Ann. Zool. Fennici 42: 1-22.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1710424&pid=S0034-7744201100010002300039&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2">Vieira, V., R. Ribeiro, L. Vargas, H. Marques, J. Povh &amp; N. Lopera. 2005. Avalia&ccedil;&atilde;o da variabilidade gen&eacute;tica de linhagens de til&aacute;pia do nilo (<i>Oreochromis niloticus) </i>com o uso do marcador de RAPD. Rev. Acad. Curitiba 3: 41-49.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1710426&pid=S0034-7744201100010002300040&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2">Wasko, A.P., C. Martins, C. Oliveira, J.A. Senhorini &amp; F. Foresti. 2004. Genetic monitoring of the Amazonian fish matrinch&atilde; (<i>Brycon cephalus</i>) using RAPD markers: insights into supportive breeding and conservation programmes. J. Appl. Ichthyol. 20: 48-52.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1710428&pid=S0034-7744201100010002300041&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2">Whitlock, M. &amp; D. MacCauley. 1999. Indirect measures of gene flow and migration: <i>F<sub>ST</sub></i>&#8800;1/(4<i>Nm</i>+1). Heredity 82: 117-125.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1710430&pid=S0034-7744201100010002300042&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2">Williams, J.G.K., M.K. Kubelik, K.J. Licak, J.A. Rafalski &amp; S.V. Tingey. 1990. DNA polymorphism amplified by arbitrary primers are useful as genetic markers. Nucleic Acids Res. 18: 6531-6535.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1710432&pid=S0034-7744201100010002300043&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2">Winkler, F.M., D. Bartley &amp; N.F. D&iacute;az. 1999. Genetic differences among year classes in a hatchery population of coho salmon (<i>Oncorhynchus kisutch </i>(Walbaum, 1792)) in Chile. Aquaculture 173: 425-433.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1710434&pid=S0034-7744201100010002300044&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2">Wright, S. 1931. Evolution in mendelian populations. Genetics 16: 97-158.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1710436&pid=S0034-7744201100010002300045&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2">Wright, S. 1943. Isolation by distance. Genetics 38: 114-138.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1710438&pid=S0034-7744201100010002300046&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p><font face="Verdana" size="2">Wright, S. 1965. The interpretation of population structure by <i>F</i>-statistics with special regards to systems of mating. Evolution 19: 395-420.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1710440&pid=S0034-7744201100010002300047&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><br>     <br> </font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p><font face="Verdana" size="2">    <br> <a name="correspondencia"></a>Correspondencia a: Julio C&eacute;sar Hurtado-Alarc&oacute;n. <font face="Verdana" size="2">Departamento de Ciencias Forestales, Universidad Nacional de Colombia, Calle 59A No 63-20, Bloque 11 Oficina 213, Medell&iacute;n, Colombia. Fax: (54) (4) 4309080; <a href="mailto:jchurtad@unal.edu.co">jchurtad@unal.edu.co</a>    <br> </font>N&eacute;stor J. Mancera-Rodr&iacute;guez. <font face="Verdana"  size="2">Postgrado en Bosques y Conservaci&oacute;n Ambiental, Universidad Nacional de Colombia, Sede Medell&iacute;n, Colombia; <a  href="mailto:njmancer@unal.edu.co">njmancer@unal.edu.co</a>    <br> </font>Clara I. Saldamando-Benjumea. <font face="Verdana" size="2">Escuela de Biociencias, Universidad Nacional de Colombia, Sede Medell&iacute;n, Colombia; </font><a href="mailto:cisaldam@unal.edu.co"><font  face="Verdana" size="2">cisaldam@unal.edu.co</font></a></font></p> <hr style="width: 100%; height: 2px;"><font face="Verdana" size="2">     <p align="center">Recibido 07-IV-2010. Corregido 14-IX-2010. Aceptado 12-X-2010.</p> </font>      ]]></body><back>
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