0001-6002 0001-6002 S0001-60022013000500009 00 12 2013 00 12 2013 55 4 199 204

Caso clinico

Primer caso de onicomicosis causada por Cylindrocarpon lichenicola, en un paciente inmunosuprimido en Costa Rica

First case of onychomycosis caused by Cylindrocarpon lichenicola in an immunosuppressed patient in Costa Rica

Mauricio Lizano-Calvo,1* Arturo Brenes-Angulo,2* Luis Gómez-Alpízar2

Resumen ]]> Antecedentes: la onicomicosis es una infección fúngica de las uñas, que puede ser causada por dermatofitos, levaduras y hongos filamentosos no dermatofitos. El objetivo del presente trabajo fue identificar -morfológica y molecularmente- un aislamiento realizado a partir de la uña del dedo medio de la mano derecha de un paciente inmunosuprimido con trasplante renal.

Métodos: a la muestra se le realizó un examen microscópico directo en KOH 40%, y las características de la colonia fueron evaluadas en medio de cultivo Agar Sabouraud Glucosado y Agar Mycosel. El hongo aislado se identificó molecularmente mediante la amplificación, por reacción en cadena de la polimerasa (PCR) y secuenciación de la región espaciadora transcrita (ITS) de los genes ribosomales y de una porción del gen del factor de elongación 1alfa (EF-1α). La secuencia de nucleótidos de cada región fue comparada con las secuencias publicadas en la base de datos del Banco de Genes del Centro Nacional para la Información Biotecnológica (NCBI).

Resultados: las características macro y microscópicas de la colonia concordaron con las descritas para Cylindrocarpon lichenicola (sinónimo Fusarium lichenicola). La secuencia de nucleótidos, tanto de la región ITS (544 pb) como de la porción del gen EF-1α (710 pb), presentó un 100% de similitud con secuencias de F. lichenicola.

Conclusión: se identificó por primera vez en Costa Rica C. lichenicola asociado con onicomicosis en un paciente inmunosuprimido. Este tipo de pacientes deben ser instruidos sobre las posibles fuentes de agentes infecciosos,

Descriptores: onicomicosis, hongos filamentosos no dermatofitos, paciente inmunosuprimido

]]>

Absract

Background: Onychomycosis is a fungal infection of nails that can be caused by dermatophytes, yeasts and non-dermatophyte filamentous fungi. The aim of this study was to perform a morphological and molecular identification of an isolate obtained from the nail of the middle finger of the right hand of an immunosuppressed patient, who underwent renal transplant.

]]> Methods: The sample was directly analyzed under the microscope in 40% KOH and cultured on Sabouraud glucose agar and Mycosel agar to study the macro and microscopic features of the colony. The isolated fungus was molecularly characterized by Polymerase chain reaction (PCR) amplification and sequencing of the internal transcribed spacer (ITS) region of the ribosomal DNA genes and a portion of translation elongation factor 1-alpha (TEF). Nucleotide sequences of each region were compared with the sequences reported in the GenBank database of the National Center for Biotechnology Information (NCBI).

Results: The macro and microscopic features of the colony were consistent with those described for Cylindrocarpon lichenicola (synonym: Fusarium lichenicola). The nucleotide sequence, both of the ITS region (544 bp) as well as that of the TEF gene (710 pb), showed a 100% nucleotide identity to sequences of Fusarium lichenicola.

Conclusion: C. lichenicola was identified associated to onychomycosis in an immunosuppressed patient in Costa Rica for the first time. These patients should be properly instructed about potential sources of infectious agents and the risks of gardening and agriculture activities.

Keywords: Onychomycosis, non-dermatophyte fungi, immunosuppressed patient.

La onicomicosis se refiere a una infección fúngica de una o más uñas, ya sea de los dedos de las manos o de los pies, y puede ser causada por cualquier hongo, levaduras y hongos filamentosos no dermatofitos.1 La onicomicosis afecta aproximadamente al 5% de la población mundial y representa entre el 20-40% de las onicopatías y aproximadamente el 30% de las infecciones cutáneas micóticas.2 En Costa Rica, un estudio sobre micosis superficiales determinó que las afecciones en uñas representaron el 67,5% de los casos atendidos en el servicio de diagnóstico de la Sección de Micología Médica de la Facultad de Microbiología de la Universidad de Costa Rica.3

Aunque por lo general una onicomicosis no pone en riesgo la vida de quien la padece, y es considerada un problema cosmético, su estado crónico puede tener importantes efectos negativos en los aspectos emocional, social y ocupacional de los pacientes.2 En pacientes inmunocomprometidos o inmunosuprimidos, por otra parte, la onicomicosis puede convertirse en un problema de salud más grave y su incidencia es mayor.4

]]> Entre los hongos filamentosos no dermatofitos que causan onicomicosis se encuentran especies de los géneros Cylindrocarpon y Fusarium.5 Ambos géneros comparten nichos ecológicos. Son habitantes comunes del suelo, tanto en regiones templadas como tropicales, y se encuentran en los residuos de plantas y material vegetal en descomposición.6-8 Algunas especies de Cylindrocarpon son fitopatógenas y afectan un amplio rango de hospedantes herbáceos y leñosos, causan decaimiento y muerte de plantas, principalmente en vivero y plantaciones jóvenes.8,9 En cultivos como la vid,9,10 árboles forestales (coníferas)11 y el ginseng,12 provocan daños económicos significativos. Fusarium es más conocido como un hongo fitopatógeno causante de enfermedades devastadoras en diferentes cultivos de importancia económica, entre ellos: banano, tomate, piña y plantas ornamentales.7,13

Globalmente, el género Fusarium es el segundo hongo filamentoso causante de infecciones en humanos,14 y como agente etiológico de onicomicosis se presenta en una frecuencia del 0,97-6%.15 Estudios recientes en Costa Rica, han reportado el género Fusarium como uno de los más comúnmente asociados a la onicomicosis en uñas de las manos y de los pies, con una incidencia del 19,0 y el 17,6 %, respectivamente,3,16,17 pero no se determinó la especie o especies presentes. A diferencia de otros géneros que causan onicomicosis, tanto el género Fusarium como el Cylindrocarpon presentan complicaciones más graves, pues son capaces de diseminarse sistémicamente, sobre todo en pacientes inmunosuprimidos o imunocomprometidos.2,4,38

En el género Cylindrocarpon, C. destructans, se ha identificado como causante de onicomicosis en un paciente con HIV/AIDS en Brasil,19 mientras que C. cyanescens, C. destructans y C. vaginae inducen pie de atleta, queratitis, micetoma, osteomielitis y peritonitis, sobre todo en personas inmunosuprimidas.6,20

La identificación de especies de los géneros Cylindrocarpon y Fusarium no es fácil, generalmente es realizada solo por microbiólogos y demanda mucho tiempo (de una a cuatro semanas), por lo que en numerosos casos clínicos, el agente etiológico se reporta como Fusarium spp. 16,1

Sin embargo, dado que la distribución varía según la región geográfica y diferentes especies, incluso aislamientos dentro de la misma especie, difieren en su sensibilidad a los compuestos antifúngicos, la correcta identificación de la especie es importante para estudios epidemiológicos, obtener información pronóstica y guiar el tratamiento terapéutico del paciente.21,22 La incorporación de técnicas moleculares, principalmente la reacción en cadena de la polimerasa (PCR, por sus siglas en inglés) y la secuenciación, ha contribuido al desarrollo de métodos de diagnóstico rápidos y precisos a nivel de especie, tanto para los géneros Cylindrocarpon y Fusarium como para otros agentes etiológicos.6,7, 23, 24

Este trabajo presenta la identificación morfológica y molecular de Cylindrocarpon lichenicola, como el agente causal de onicomicosis en la uña del dedo medio de la mano derecha de un paciente inmunosuprimido.

]]>

Presentación de caso

Paciente masculino de 39 años, indígena costarricense, sometido a trasplante renal hacía 3,5 años, debido a insuficiencia renal crónica, con tratamiento inmunosupresor para evitar rechazo, con hipertensión arterial secundaria y bajo control y tratamiento médico. Presentó una lesión e infección en la uña del dedo medio de la mano derecha (Figura 1a).

Se tomaron muestras mediante raspado de la uña por la parte en contacto con el lecho ungueal. Se realizó un examen microscópico directo en hidróxido de potasio (KOH) al 40%, para establecer la presencia de elementos fúngicos. Otras muestras se cultivaron en agar Sabouraud glucosado (ASG, Difco, BD EE.UU) y en agar Mycosel(BDEE.UU),ysemantuvierona25 ºCporalmenos22días, con el fin de obtener colonias de los hongos. La identificación del aislamiento se realizó con base en las características macroscópicas de la colonia y microscópicas mediante la observación de preparaciones con montaje en azul de lactofenol.

A partir del aislamiento obtenido se realizó la extracción del ADN genómico por duplicado. La extracción del ADN se efectuó según el protocolo descrito por Salazar et al.25 El ADN genómico se empleó para amplificar, mediante la técnica de reacción en cadena de la polimerasa (PCR), la región del espaciador interno transcrito (ITS, por sus siglas en inglés “Internal Transcribed Spacer”) del ADN ribosomal (ADNr), incluidas las regiones ITS1-5.8S e ITS2, con los imprimadores universales ITS6 (5’GAAGGTGAAGTCGTAACAAGG3’) e ITS4 (5’TCCTCCGCTTATTGATATGC3’)26 y una porción del gen del factor de elongación 1alfa (EF-1α o TEF, por sus siglas en inglés) con los imprimadores ef1 (5`-ATGGGTAAGGA(A/G) GACAAGAC-3`) y ef2 (5`-GGA(G/A)GTACCAGT(G/C)ATCA TGTT-3`).27 La mezcla de reacción de PCR tuvo un volumen final de 25 μL, compuesta por 11,55 µL de agua nanopura estéril, 2,5 µL de 10x Buffer; 2 µL de cada iniciador (10µM); 2 µL de dNTP’s (2mM); 1,7µL de MgCl2 (25 mM); 1 µL de BSA (20mg/mL); 0,25 µL DreamTaqTM de polimerasa (5 U/ μL) DreamTaqTM (Fermentas, EE.UU); 2 µL de ADN (dilución 1:10, aproximadamente 30 ng). La amplificación se realizó en un termociclador Applied Biosystems VeritiTM (Life Technologies, EE.UU) con el siguiente programa térmico: desnaturalización inicial 94ºC por 3 min; 35 ciclos bajo las siguientes condiciones 45 segundos a 94ºC, 60 segundos a 55ºC (ITS) o 53ºC (EF-1α); 45 segundos a 72ºC y una extensión final durante 5 minutos a 72ºC. El producto de PCR se analizó por electroforesis en gel de agarosa (TopVisionTM, Fermentas, EE.UU) al 1,6% (p/v) en 0,5X tris-EDTA buffer (TBE) y 2 μL de GelRedTM (Biotium, EE.UU). Las condiciones de la electroforesis fueron 90V durante 60 minutos y la visualización posterior de los fragmentos amplificados se realizó en un transiluminador UV (Uvisave Gel Documentation Systems HD2 LCD®, UVITEC CAMBRIDGE, Inglaterra). El marcador de peso molecular utilizado fue una mezcla de bandas de ADN de 100 pb de diferencia (Gene RulerTM 100 bp Plus DNA Ladder, Fermentas, EE.UU). El fragmento amplificado se purificó mediante vía enzimática, con adición de 4 μL de Exo/ (Exonucleasa I; Fermentas EE.UU)

y 2 μL de FastAP (fosfatasa alcalina termosensible; Fermentas EE.UU) e incubación a 37ºC por 15 minutos y luego a 85ºC por15 minutos, para la inactivación de las enzimas. Los fragmentos purificados se enviaron a secuenciar en ambas direcciones (5’→3’ y 3’→5’) a la compañía Macrogen, Inc. (Corea del Sur), con los iniciadores ITS6 e ITS4 y ef1 y ef2, respectivamente. Las secuencias obtenidas para cada imprimador se analizaron con el programa BioEdit Sequence Alignment Editor version 7.0.5.3 28  y se obtuvo la secuencia consenso, la cual fue comparada con las

]]> secuencias publicadas en la base de datos del Banco de Genes del Centro Nacional para la Información Biotecnológica (National Center for Biotechnology Information NCBI, USA), mediante la opción BLASTn (http://www.ncbi.nlm.nih.gov/BLAST).

El examen microscópico directo de la muestra en KOH al 40% reveló la presencia de elementos fúngicos (Figura. 1b). De las muestras cultivadas en ASG y en agar Mycosel se obtuvieron colonias similares a las descritas para los géneros Cylindrocarpon y Fusarium. En el medio ASG la colonia fue inicialmente de color rosado tenue, de rápido crecimiento, y adquirió con el tiempo un color morado intenso con apariencia alanada blanca, y al reverso una pigmentación de color púrpura (Figuras 2a y b). En agar Mycosel las colonias fueron de color negro y de crecimiento pobre, sobre las cuales se forma posteriormente una capa blanca aterciopelada.

El análisis microscópico de las preparaciones con azul de lactofenol del micelio de las colonias formadas en ASG, mostró hifas hialinas septadas, microconidios ovales y unicelulares, macroconidios cilíndricos de paredes delgadas con dos a cuatro septos, ápice redondeado y base plana (Figura. 2d); clamidodosporas terminales e intercalares agrupadas en cadenas (Figura. 2c). Los tipos de conidios y clamidosporas observados fueron coincidentes con los descritos para C. lichenicola. 6

El producto de PCR obtenido con los iniciadores ITS6/ITS4 y ef-1/ef-2 correspondió, en ambas muestras, a un fragmento de ADN de aproximadamente 650 y 800 pares de bases (pb), respectivamente. La porción de nucleótidos secuenciada fue de 544 pb para la región ITS y de 710 pb para el gen EF-1α. Para ambas regiones, la secuencia fue idéntica en las dos muestras.

En el Banco de Genes del NCBI, la secuencia ITS se alineó con un índice de similaridad de nucleótidos del 100% con dos secuencias (números de accesión DQ 094444 y DQ 094355) de F. lichenicola (sinónimo C. lichenicola). Por su parte, la secuencia del gen EF-1α se alineó con un 100% de similitud con la secuencia  DQ246877, que también correspondió a F. lichenicola. También se obtuvo índices de similaridad del 98%-100 con secuencias de Fusarium solani, para ambas regiones secuenciadas, ITS y EF-1α.

Discusión

El presente estudio describe un caso de onicomicosis causada por Cylindrocarpon lichenicola, en la uña del dedo medio de la mano derecha de un paciente con trasplante renal, tratado en el Hospital Calderón Guardia, en Costa Rica. La identificación del hongo se considera robusta, ya que se basó en una caracterización morfológica y molecular.

]]>
En Costa Rica, Fusarium se ha identificado como agente etiológico de onicomicosis en uñas de las manos y de los pies, con una frecuencia del 19,0 y el 17,6%, respectivamente,16 pero no se determinó la especie (o especies) presente. Esta es la primera vez que se identifica C. lichenicola (sinónimo F. lichenicola) asociado a onicomicosis en Costa Rica. A nivel mundial, las especies F. oxysporum y F. solani son las más comúnmente asociadas a onicomicosis,15,23,29,30 aunque otras especies como F. proliferatum, F. verticillioides y F. sacchari también han sido identificadas como agentes causales de onicomicosis, aún en pacientes inmucompetentes.15,29,30 En cuanto a especies del género Cylindrocarpon, la especie C. detructans se identificó como el agente causal de un caso de onicomicosis en uñas de los dedos del pie, de un paciente brasileño con HIV/AIDS, dedicado a labores de jardinería.19

F. oxysporum se considera el agente causal de infecciones en uñas de dedos de las manos y de los pies, mientras que F. solani es aislado frecuentemente solo en uñas de los pies, y en menor frecuencia en uñas de la mano.15,29,30 Cabe señalar que tanto

F. oxysporum como F. solani son especies complejas, es decir, que aunque morfológicamente se consideran una sola especie, en realidad representan un conjunto o complejo de especies (SC “species complex”), FOSC y FSSC,24,30 respectivamente.

F. lichenicola es una de las especies de FSSC,31 lo que coincide con el hecho de que en la presente investigación, el análisis molecular evidenció una alta similitud (98 a 100%) del aislamiento en estudio con F. solani.

]]>
Las especies de los géneros Cylindrocarpon y Fusarium son morfológica y taxonómicamente similares. F. lichenicola ha pasado por varios cambios de nombre.20,31 El hongo fue descrito por primera vez en 1913, por C.B. Massalongo, como F. lichenicola. En 1916 fue colocado en el género Bactridium como B. lichenicola. En 1939 fue clasificado por primera vez como una especie del género Cylindrocarpon, C. tonkinense Bugn. En 1979, con base en el criterio de prioridad, se ordenó asignar el nombre de la primera especie y se denominó C. lichenicola (C. Massal.) Hawksworth.20,31 Finalmente, en 2002, el nombre original, Fusarium lichenicola, fue restablecido por Summerbell y Schroers,32 con base en análisis filogenéticos de la subunidad grande del ARN ribosomal (LSU). Estos autores notaron una estricta correspondencia entre los casos de infección en humanos atribuidos a C. lichenicola y aquellos causados por miembros de FSSC. Los análisis mostraron que C. lichenicola es miembro del FSSC y el nombre F. lichenicola fue restablecido. Las otras especies del género Cylindrocarpon forman un grupo filogenéticamente bien separado de FSSC y otros grupos de Giberella, estado perfecto (sexual) de Fusarium.

Lo anterior implica que en algunos casos de onicomicosis, los aislamientos identificados como F. solani podrían ser F. lichenicola, y viceversa. Es obvio que dadas las similitudes morfológicas, genéticas y epidemiológicas entre F. lichenicola y otros miembros de la especie compleja FSSC, los casos de infección reportados han sido causados por uno u otro. Esto reafirma la necesidad de un diagnóstico correcto del agente causal de la onicomicosis.

La identificación de hongos a nivel de especie por los métodos clásicos es una tarea difícil y demanda mucho tiempo. Se estima entre el 30 y el 50% de error en la identificación de especies de Fusarium con base en la morfología.33 La experiencia requerida solo está disponible, en la mayoría de los casos, en los laboratorios de referencia, y la identificación es realizada por microbiólogos especializados, pero al menos dos semanas son necesarias para aislar e identificar la especie del hongo. Esto resulta en una alta proporción de casos no identificados a nivel de especie. En este estudio, la aplicación de técnicas moleculares (la amplificación y secuenciación de la región ITS y de una porción del gen EF1α) fue exitosa y permitió la identificación del aislamiento obtenido como F. lichenicola, lo que corrobora su utilidad para diagnóstico. Ambas regiones han sido utilizadas para la identificación molecular de especies de Fusarium de importancia clínica, incluidas aquellas causantes de onicomicosis.7,15,23,24,29,30,33

Se recomienda utilizar técnicas moleculares para determinar las especies de Fusarium u otros hongos filamentosos no dermatofitos asociadas a la onicomicosis en Costa Rica. Esta información es importante no solo desde el punto de vista epidemiológico, sino debido a las diferencias en susceptibilidad a los antimicóticos entre especies, e inclusive aislamientos dentro de la misma especie,21,33 lo que permitiría guiar el tratamiento y prescribir antimicóticos alternativos en aquellos casos que no responden al tratamiento inicial.34,35 En cuanto a Fusarium, se han creado bases de datos de libre acceso con secuencias de diferentes regiones del genoma (ITS, EF-1α y otras), en las que se puede comparar la secuencia de los aislamientos en estudio con aquellas de la base, para una correcta identificación.24,27,36,37

El paciente del que se aisló C. lichenicola está sometido a tratamiento inmunosupresor debido a su trasplante de riñón.

]]>

La condición de inmunosuprimido o inmunocomprometido ha sido asociada a las infecciones en humanos causadas por hongos del género Fusarium, lo que representa un factor de predisposición o riesgo.18 Es preciso recordar que especies del género Fusarium son capaces de diseminarse desde las uñas infectadas hacia otros sitios, bajo condiciones favorables.18,20 Casos de infección diseminada o micetomas a partir de lesiones en uñas de los dedos de la mano o del pie provocados por F. lichenicola, han sido descritos en pacientes inmunosuprimidos en Tailandia,13 Bélgica20 e Israel.38

Cylindrocarpon y Fusarium son habitantes comunes de climas tropicales, distribuidos en los suelos, en las partes subterráneas y aéreas de plantas, restos vegetales y otros sustratos orgánicos y, posiblemente, en el agua y el aire. La identificación de C. lichenicola (sinónimo F. lichenicola ) asociado a una onicomicosis localizada no invasiva, en un paciente trasplantado, de una zona rural, sugiere que las personas inmunodeprimidas deben ser adecuadamente educadas sobre las posibles fuentes de agentes infecciosos, en particular acerca de los riesgos que pueden generar la jardinería o la agricultura. Es probable que las infecciones ocurran debido a la oportunidad que estas actividades proveen para el encuentro entre los pacientes susceptibles y los agentes infecciosos.13

Referencias

1. Relloso S, Arechavala A, Guelfand L, Maldonado I, Walker L, Agorio I, et al. Onicomicosis: estudio multicéntrico clínico, epidemiológico y micológico. Rev Iberoam Micol 2012; 29:157– 163.         [ Links ]

2. Kaur R, Kashyap B, Bhalla P. Onychomycosis -epidemiology, diagnosis and management. Indian J Med Microbiol 2008; 26:108-16.         [ Links ]

3. Salas-Campos I, Gross-Martínez N, Carrillo-Dover P. Micosis superficiales diagnosticadas en el laboratorio de micología médica de la Universidad de Costa Rica. Rev costarric cienc méd 2007; 28:29-35.         [ Links ]

4. Nir-Paz R, Strahilevitz, J, Shapiro M, Keller N, Goldschmied-Reouven A, Yarden O, Block C, et al. Clinical and epidemiological aspects of infections caused by Fusarium species: A collaborative study from Israel, J Clin Microbiol 2004; 42:3456-3461.         [ Links ]

5. Salas-Campos I. Hongos filamentosos no dermatofitos como agentes etiológicos de onicomicosis. Rev Colegio de Microb Quim Clin Costa Rica 2013; 19:21-25.         [ Links ]

6. Liu D. Cylindrocarpon. In: Dongyou Liu editor. Molecular Detection of Human Fungal Pathogens. 1st edition Bosa Roca US: Taylor &Francis Inc. 2011:411-415.         [ Links ]

7. Manikandan P, Galgóczy L, Panneer Selvam K, Shobana C, Kocsubé S, Vágvölgyi C, et al. Fusarium. In: Dongyou Liu editor. Molecular Detection of Human Fungal Pathogens. 1st edition Bosa Roca, US: Taylor &Francis Inc, 2011:417-433.         [ Links ]

8. Chaverri C, Salgado Y, Hirooka A, Rossman Y, Samuels GJ. Delimitation of Neonectria and Cylindrocarpon (Nectriae, Hypocreales, Ascomycota) and related genera with Cylindrocarpon-like anamorphs. Stud Mycol 2011; 68:57–78.         [ Links ]

9. Alaniz S, León M, Vicent A, García-Jiménez J, Abad-Campos P, Armengol J. Characterization of Cylindrocarpon species associated with black foot disease of grapevine. Plant Dis 2007; 91:1187-1193.         [ Links ]

10. Agustí-Brisach C, Armengol J. Effects of temperature, pH and water potential on mycelia growth, sporulation and chlamydospore production in culture of Cylindrocarpon spp. associated with black foot of grapevines. Phytopathol Mediterr 2012; 51:37−50.         [ Links ]

11. Dumroese R.K., James R.L., Wenny, D.L. Hot water and cooper coatings in reused containers decrease inoculum of Fusarium and Cylindrocarpon and increase Douglas fir seedling growth. HortScience 2002; 37:943-947.         [ Links ]

12. Jang Y, Gyu Kim S, Ho Kim Y. Biocontrol Efficacies of Bacillus Species Against Cylindrocarpon destructans Causing Ginseng Root Rot. Plant Pathol J 2011; 27:333-341.         [ Links ]

13. Zhang N, O’Donnell K, Sutton DA, Nalim FA, Summerbell RC, Padhye AA, et al. Members of the Fusarium solani species complex that cause infections in both humans and plants are common in the environment. J Clin Microbiol 2006; 44: 2186–2190.         [ Links ]

14. Fariñas MC, Fernández-Sampedro M, Armiñanzas C. Formas clínicas y tratamiento de las infecciones causadas por otros hongos filamentosos. Enferm Infecc Microbiol Clin. 2012: 30:414–419.         [ Links ]

15. Guilhermetti E, Takahachi G, Suemi Shinobu C, Estivalet Svidzinski TI. Fusarium spp. as agents of onychomycosis in immunocompetent hosts. International J Dermatol 2007; 46: 822–826.         [ Links ]

16. Salas Campos I, Hernández-Chavarría F. Fusarium como agente etiológico de onicomicosis: informe de tres casos y revisión de la literatura. Rev costarric cienc méd 2005; 26: 53-59.         [ Links ]

17. Salas-Campos I, Gross-Martínez N. Agentes etiológicos de onicomicosis diagnosticadas en el laboratorio de micología médica de la Universidad de Costa Rica. Acta Méd Costarric 2012; 54: 114-118.         [ Links ]

18. Nucci M, Anaissie E. Fusarium infections in immunocompromised patients. Clin Microbiol Rev 2007; 20: 695–704.         [ Links ]

19. Norgueira Cambuim IIF, Cerqueira Macedo DP, Delgado M, de Magalhaes Lima K, Pereira Mendes G, de Souza Motta CM, et al. Avaliação clínica e micológica de onicomicose em pacientes brasileiros com HIV/AIDS. Rev Soc Bras Med Trop 2011, 44:40-42.         [ Links ]

20. Rodriguez-Villalobos H, Georgala A, Beguin H, Heymans C, Pye G, Crokaert F, et al. Disseminated Infection due to Cylindrocarpon (Fusarium) lichenicola in a Neutropenic Patient with Acute Leukaemia: Report of a Case and Review of the Literature. Eur J Clin Microbiol Infect Dis 2003; 22: 62–65.         [ Links ]

21. Tortorano AM, Prigitano G, Dho MC, Esposto C, Gianni A, Grancini C, et al. Species distribution and in vitro antifungal susceptibility patterns of 75 clinical isolates of Fusarium spp. from northern Italy. Antimicrob. Agents Chemother. 2008; 52: 2683–2685.         [ Links ]

22. Alastruey-Izquierdo A, Cuenca-Estrella M, Monzon A, Mellado E, Rodríguez-Tudela JL. Antifungal susceptibility profile of clinical Fusarium spp. isolates identified by molecular methods. J Antimicrob Chemother 2008; 61:805–809.         [ Links ]

23. Ninet B, Jan I, Bontems O, Léchenne B, Jousson O, Lew D, et al. Molecular identification of Fusarium species in onychomycoses. Dermatology 2005; 210: 21–25.         [ Links ]

24. Balajee SA, Borman AM, Brandt ME, Cano J, Cuenca-Estrella M, Dannaoui E, et al. Sequence-based identification of Aspergillus,         [ Links ]

25. Fusarium, and Mucorales species in the clinical mycology laboratory: where are we and where should we go from here? J Clin Microbiol 2009; 47: 877–884.         [ Links ]

26. Salazar E, Hernández R, Tapia A, Gómez-Alpízar L. Identificación molecular del hongo Colletotrichum spp., aislado de banano (Musa spp) de altura en la zona de Turrialba y determinación de su sensibilidad a fungicidas poscosecha. Agronomía Costarricense 2012; 36: 53-68.         [ Links ]

27. White TJ, Bruns T, Lee S, Taylor J. Amplification and direct sequencing of fungal ribosomal RNA genes for phylogenetics. In: PCR protocols: a guide to methods and applications. New York: Academic Press, 1990: 315-322.         [ Links ]

28. Geiser DM, Jiménez-Gasco DM, del M M, Kang S, Makalowska I, Veeraraghavan N, et al. FUSARIUM-ID v. 1.0: A DNA sequence database for identifying Fusarium. Eur J Plant Pathol 2004; 110: 473–479.         [ Links ]

29. Hall TA. BioEdit: a user-friendly biological sequence alignment editor and analysis program for Windows 95/98/NT. Nucl. Acids. Symp. Ser. 1999; 41:95-98.         [ Links ]

30. Castro López N, Casas C, Sopo L, Rojas A, Del Portillo P, Cepero de García MC, et al. Fusarium species detected in onychomycosis in Colombia. Mycoses 2008; 52: 350–356.         [ Links ]

31. Migheli Q, Balmas V, Harak H, Sanna S, Scherm B, Aoki T, et al. Molecular Phylogenetic Diversity of Dermatologic and Other Human Pathogenic Fusarial Isolates from Hospitals in Northern and Central Italy. J Clin Microbiol. 2010; 48: 1076–1084.         [ Links ]

32. Kaben U, Beck R, Tintelnot K. Keratomykose durch Cylindrocarpon lichenicola. Mycoses 2006; 49: 9–13.         [ Links ]

33. Summerbell R.C., Schroers H.J. Analysis of phylogenetic relationship of Cylindrocarpon lichenicola and Acremonium falciforme to the Fusarium solani species complex and a review of similarities in the spectrum of opportunistic infections caused by these fungi. J Clin Microbiol. 2002; 40: 2866–2875.         [ Links ]

34. Wang H, Xiao M, Kong F, Chen S, Dou HT, Sorrell T, et al. Practical Identification of 20 Fusarium Species by Seven-Locus Sequence Analysis and Reverse Line Blot Hybridization, and an In Vitro Antifungal Susceptibility Study. J Clin Microbiol. 2011; 49: 1890–1898.         [ Links ]

35. Brasch J, Koeppl G. Persisting onychomycosis caused by Fusarium solani in an immunocompetent patient. Mycoses 2008; 52: 285– 286.         [ Links ]

36. Baudraz-Rosselet F, Ruffieux C, Lurati M, Bontems O, Monod M. Onychomycosis Insensitive to Systemic Terbinafine and Azole Treatments Reveals Non-Dermatophyte Moulds as Infectious Agent. Dermatology 2010; 220:164–168.         [ Links ]

37. O’Donnell K, Sutton D, Rinaldi M, Sarver B, Balajee SA, Schroers HJ, et al.. Internet-accessible DNA sequence database for identifying fusaria from human and animal infections. J Clin Microbiol 2010; 48:3708–3718.         [ Links ]

38. O’Donnell K, Gueidan S, Sink P, Johnston P, Crous A, Glenn R, et al.. A two-locus DNA sequence database for typing plant and human pathogens within the Fusarium oxysporum species complex. Fungal Genetics Biology 2009; 46: 936–948.         [ Links ]

39. Chazan B, Colodner R, Polacheck I, Shoufani A, Rozenman D, Raz R. Mycetoma of the Foot Caused by Cylindrocarpon lichenicola in an Immunocompetent Traveler. J Travel Med. 2004; 11:331–332.         [ Links ]

Afiliación de los autores: 1Hospital Calderón Guardia. Servicio de Patología-Cátedra de Parasitología Universidad de Costa Rica. 2Laboratorio de Biotecnología de Plantas, Centro de Investigaciones Agronómicas, Universidad de Costa Rica. mlizanoc@gmail.com

Trabajo realizado en el Hospital Calderón Guardia y en el Centro de Investigaciones Agronómicas de la Universidad de Costa Rica

particularmente los riesgos que pueden generar la jardinería y la agricultura.  

Recibido: 11 de diciembre de 2012 Aceptado: 22 de agosto de 2013  
]]> 2012 29 157- 163 2008 26 108-16 2007 28 29-35 2004 42 3456-3461 2013 19 21-25 2011 1 411-415 2011 1 417-433 2011 68 57-78 2007 91 1187-1193 2012 51 37−50 2002 37 943-947 2011 27 333-341 2006 44 2186-2190 2012 30 414-419 2007 46 822-826 2005 26 53-59 2012 54 114-118 2007 20 695-704 2011 44 40-42 2003 22 62-65 2008 52 2683-2685 2008 61 805-809 2005 210 21-25 2009 47 877-884 2012 36 53-68 1990 315-322 2004 110 473-479 1999 41 95-98 2008 52 350-356 2010 48 1076-1084 2006 49 9-13 2002 40 2866-2875 2011 49 1890-1898 2008 52 285- 286 2010 220 164-168 2010 48 3708-3718 2009 46 936-948 2004 11 331-332